第一篇：血細胞分析后的質量保證

［摘 要］ 目的：了解血細胞分析后質量保證的要點。方法：對常見影響因素進行分析和處理。結果：影響血細胞分析檢測結果的因素是多方面的，包括樣本、操作、儀器、藥物、環境溫度、生理狀態、責任心等諸多因素。結論：分析后的質量保證工作是確保血細胞分析檢測報告質量的十分重要的一個環節。

［關鍵詞］ 血細胞；分析后；質量保證

在醫學檢驗工作中，血細胞分析是最為常用的項目之一，其質量水平影響范圍最廣、涉及疾病最多。血細胞分析儀代替傳統的手工法在血細胞分析工作中已經得到了廣泛的應用，盡管進行了嚴格的校準，在分析前和分析中都進行了規范化的質量控制措施，也不等于每一次、每一批樣本的檢測結果就是完全準確無誤的。在實際工作中，仍然會受到樣本、操作、儀器、藥物、環境溫度、生理狀態、責任心等諸多因素的影響，可以造成個別樣本或一部分樣本出現較大的誤差。因此，每發一張報告之前，都應該認真觀察各項指標與臨床診斷是否相符，指標與指標之間是否相符，參考各種血液分析圖像，同時還要連續關注患者的測定結果，參考以前的報告，綜合分析確認無誤后方可發出報告。這就是通常所說的血細胞分析后的質量保證，通俗的說就是結果的審核，通過蛛絲馬跡找出干擾血細胞分析的原因，并進行相應的處理?，F結合多年臨床工作經驗，從以下幾點介紹血細胞分析后質量保證的體會。影響白細胞(WBC)分析常見的原因

1.1 難溶性紅細胞(RRBC)的影響 新生兒紅細胞(RBC)、某些肝病患者紅細胞膜質類異常，具有抵抗溶血劑作用，使紅細胞溶血不完全，導致WBC計數結果假性增高，且分類結果淋巴細胞增高，中性粒細胞減少。此種情況，在CD1700 WBC直方圖會有明顯異常表現，呈干擾圖形，在35 fl前區出現狹窄而較高的峰，分類淋巴細胞偏高，中性粒細胞下降；有時淋巴細胞分類甚至可高達80%~90%，如果結果報出去，臨床上容易誤認為血液病，但CD3700血細胞分析儀對這種狀況會有RRBC的警告提示，可通過選擇RESISTANT RBC樣本測定模式進行分析，在這種模式下運行，樣本將通過較長時間的孵育，從而使試劑充分發揮作用以達到溶解RRBC的結果，其WBC計數及分類結果較為準確。在工作中，遇到膽紅素較高的樣本應特別注意RRBC對WBC結果的影響。

1.2 巨大血小板可計數為WBC。

1.3 冷凝集素能引起WBC計數假性增高 因為相當于WBC大小的蛋白質結晶被計數為WBC，此時應將樣本置于40 ℃左右溫箱或水浴箱中加熱約15 min～30 min，待其加熱到37 ℃后蛋白質結晶會消失，此時立即混勻重新上機測定即可。

1.4 有核RBC出現亦會影響WBC計數。Hb、RBC檢測結果的審核

血細胞分析測量報告的參數之間，存在有許多內在聯系，比如Hb、RBC與MCH，Hb、HCT與MCHC，RBC、HCT與MCV之間，RDW與涂片的RBC形態變化，均有明顯的相關關系。在審核RBC的相應測定值時，應仔細觀察Hb/RBC的比值以及MCV、MCH、MCHC的測定值。一般正常人Hb/RBC的比值約為30∶1(Hb的單位為“g/L”，RBC的單位為“1012/L”)，MCV的值約為80 fl~100 fl、MCH的值約為27 pg~32 pg、MCHC約為325 g/L~355 g/L。一般來說，MCHC的值個體間差異小，相對較為恒定，是觀察儀器可信性、樣本狀況較為實用的一個指標，如果出現批量明顯增高或降低，則應考慮為系統誤差，觀察是否為儀器故障或是試劑問題，應仔細查找原因。如果單個血細胞分析結果中出現過高的MCV、MCH、MCHC，且RBC數與Hb濃度比例明顯不當，出現這類檢測結果一般主要有以下兩種情況：一是樣本有溶血，使RBC結果假性減低，導致HCT↓、MCH↑、MCHC↑；二是樣本內含有較高的冷凝集素，在抽取全血樣本后，盡管抗凝效果很好，但在體外還是會發生RBC凝集，抗凝管內的RBC可形成細小的、肉眼可見的凝集顆粒，有些RBC的凝集顆粒很小，肉眼難以觀察到。無論凝集顆粒是大是小，一旦形成冷凝集，就會使血細胞分析的結果出現很大偏離。一般認為所謂冷凝集現象，一定是在室溫很低的情況下才會發生，其實不然，我們在夏天氣溫較高時就碰到過冷凝集樣本，有些患者的冷凝集素效價很高，溫度范圍寬，出現冷凝集時的血細胞分析結果可導致Hb和RBC的比值出現很大偏差，且MCH、MCHC的值與正常參考值極度偏離。所以，我們收到血細胞分析樣本時，應仔細觀察樣本，及早發現問題；在審核報告單時，除了重點審查幾大主要指標外，千萬不要放過MCV、MCH、MCHC。尤其是MCHC，往往能幫助我們發現比較嚴重的錯誤，有冷凝集的樣本，一經發現，處理比較簡單，方法如上所述，另外，高脂血癥可使Hb假性增高，甚至可增高達30 g/L；血液中白細胞顯著增高時亦會影響RBC計數的準確性；血小板數太高時也會使Hb假性增高。[!--empirenews.page--] 3 血小板計數干擾因素分析

3.1 使用血細胞分析儀引起血小板計數假性減低的常見原因 血小板聚集或凝集，如EDTA誘導血小板減少癥；臨床上用ATP后血小板容易發生聚集，因ATP分解，產生大量ADP，而ADP是一種血小板誘導劑，易使血小板發生聚集而影響血小板計數，導致血小板計數偏低［1］。衛星現象，因EDTA抗凝血中血小板粘附于分葉核粒細胞表面，所以計數時沒有包括在內，出現巨大血小板。血細胞分析儀PLT的檢測閾值一般為2 fl～30 fl，由于某些血小板太大超過檢測閾值而未被計數，造成血小板計數假性減少。血小板可逆聚集亦會對血小板計數產生影響，因此患者抽血后應盡量放置一定時間(一般約為30 min)再進行測定。

3.2 小RBC對血小板計數的影響 當患者RBC大小不均、以小RBC(MCV＜70 fl，且RDW明顯增大)居多時，部分極小RBC會計入血小板數，引起血小板數假性增高。這種現象在使用CD1700血細胞分析儀時極易出現，因CD1700血小板計數是采用電阻抗原理，血小板和RBC是在同一個檢測系統中通過顆粒大小來加以識別，血小板與RBC測量的信號常有交叉，小RBC的脈沖信號可能被視為血小板信號，而導致血小板計數假性增高，此時應顯微鏡計數血小板以保證結果的準確性，但CD3700血細胞分析儀對抗小RBC干擾的能力較強，雖然也是采用電阻法進行測定，但CD3700運用改良RBC及PLT相交曲線的準確分隔，以擋流板技術消除RBC通過小孔時渦流對血小板計數的影響，以擬合曲線消除碎片及小RBC的干擾，提高了血小板計數的準確性。樣本因素

當血細胞分析結果與臨床診斷不符時，應首先排除樣本原因，重新核對樣本標簽，觀察樣本的外觀，并進行二次檢測，避免因樣本弄錯或編號錯誤而造成檢測結果張冠李戴，出現嚴重的連鎖反應，造成無可挽回的損失，另外還應特別觀察樣本稀釋、樣本抗凝不佳和溶血等現象。這種情況尤以夜班或急診患者多見，有時直接從輸液管抽血或從輸液的同側手臂抽血，血液顏色較淡，離心后上層血漿感覺沒有粘性，顏色也不象正常樣本的黃顏色，如同時抽取幾管血，會發現幾管血的顏色深淺明顯不一致，樣本明顯稀釋，另外，還常見樣本抗凝不完全的現象，凝塊較小，有時肉眼幾乎難以辨認，做了之后發現PLT數較低，與臨床不相符，此種情況多見于實習護士較多或新進護士時，此時應積極與臨床聯系，核實樣本抽取情況，必要時通知臨床重新采血復查，并告知正確采血方法，如不是急診患者，應盡量在清晨未用藥、未輸液之前采血；如為急診，且已經在輸液，應強調不能在輸液的同側手臂抽血。不同生理狀態對測定結果的影響

不同生理狀態下血細胞各參數會有所不同，比如妊娠5個月以上或新生兒WBC總數明顯增高；暴熱或嚴寒常出現一過性WBC總數增高。飲食和運動對檢測結果亦會產生相應影響，進食喝水后，血液會有生理性稀釋作用，RBC數和Hb檢測結果會有所下降；劇烈體育運動后血液濃縮，此時迅速采集血液可使RBC數和Hb檢測結果增加約10%。新生兒和小兒痛哭后毛細血管血WBC計數可顯著增加［2］；每日不同時間WBC總數也有一定差別。由此可見不同生理狀態對血細胞分析測定結果的影響之大，因此，對于動態觀察指標的非急診患者最好固定某一時間檢查，以盡量減少不同生理狀態對檢測結果的影響。[!--empirenews.page--] 6 緊密聯系臨床

在審核報告單發現較為異常的結果時應多與臨床醫生主動聯系，看其是否可以從臨床角度加以解釋，或是否與其他檢測參數相關。比如脾亢患者，在手術前血小板降低，手術后血小板數目會逐漸升高，有時甚至會達到1 000×109/L以上，所以，檢驗人員還應多了解必要的臨床知識，便于與臨床醫生溝通，有效的分析檢驗結果，更好地為臨床服務。總之，血細胞分析是檢驗工作中最基礎也是應用最廣的檢驗項目，需要我們在實際工作中不斷學習、探討和總結，同時，作為一名檢驗人員，應具備高度的責任心，嚴格按報告單審核程序進行審核。當發現較為異常的結果時，不能嫌麻煩，抱有僥幸心理，該復檢的一定要復檢，該與臨床聯系的一定要聯系。在做好分析前、分析中質量工作的基礎上，認真仔細地做好血細胞分析后的質量保證工作，才能更全面、更有效地保證血細胞分析結果的準確性和精密度。

第二篇：血細胞分析作業指導書

血細胞分析檢驗程序 檢驗目的

檢測血液中血細胞(紅細胞、白細胞和血小板)數量、白細胞分類及相關參數(HGB、HCT、MCV、MCH、MCHC、RDW及MPV等)的變化對臨床有關疾病的診斷、觀察疾病的變化及治療效果具有重要參考價值。2 檢測原理

血常規檢查方法采用血細胞自動分析儀法，參見《全國臨床檢驗操作規程》p7～11，部分白細胞分類計數采用顯微鏡檢查法，參見《全國臨床檢驗操作規程》p5～7。

2.1 電阻抗法血細胞計數（光電6318-K）：即在細胞檢測器微孔的兩側各有一個電極，兩電極間通有恒定電流，經過稀釋液(電解質溶液)稀釋的血樣(血細胞)在通過檢測器微孔時，產生了一個電脈沖；脈沖的高低代表細胞體積的大小，脈沖的個數代表細胞的數量。

2.2 細胞化學和光散射法白細胞計數(Ac.T 5-diff)：即將血液經過細胞化學試劑染色，不同的白細胞胞漿內部即可出現不同的酶化學反應。當這些細胞通過測量區時，由于酶反應強度不同和細胞體積大小差異，激光束射到細胞上的前向角和散射角不同，以X軸為吸光率，Y軸為光散射，每個細胞產生兩個信號結合定位在細胞分布散點圖上。計算機對存儲的測量信息進行分析處理，得出白細胞總數和分類計數結果。

2.3 多角度激光法白細胞計數(XE-2100 XT-1800i)：在白細胞分類通道：全血加入溶血劑(FD-Ⅰ和FD-Ⅱ)作用后，嗜酸性粒細胞內顆粒被染色；其它白細胞略有皺縮。WBC/BASO通道：全血加入溶血劑(FB)溶血。除BASO外，其它白細胞均明顯皺縮。儀器從低角度及高角度分析白細胞的內部結構。計算機對存儲的測量信息進行分析處理，得出白細胞總數和分類計數結果。

2.4 光電比色法測量血紅蛋白：在稀釋的血樣中加入溶血劑使紅細胞膜破裂釋放出血紅蛋白，后者與溶血劑中有關成分結合形成Hb衍生物，進入Hb測試系統，在特定波長(一般在530～550nm)下比色，吸光度的變化與液體中Hb含量成正比，儀器便可顯示其濃度。不同型號的血細胞分析儀配套溶血劑配方不同，形成的Hb衍生物亦不同，其吸收光譜各異但最大吸收均接近540nm。2.5 光散射法紅細胞和血小板計數(Ac.T 5-diff)：以二維激光散射法檢測紅細胞和血小板。紅細胞測試原理是：在測試系統中，全血與紅細胞/血小板稀釋液混合，使自然狀態下雙凹盤狀扁平圓形的紅細胞成為球形并經戊二醛固定，此種處理并不影響MCV體積。紅細胞無論以何種方位通過測量區時，被激光束照射后所得的信號是相同的。激光束以低角度前向光散射和高角度光散射同時測量一個紅細胞，根據低角度光散射轉換能量大小，測量單個紅細胞體積與總數；根據高角度光散射得出單個紅細胞內血紅蛋白濃度。血小板與紅細胞在一個系統中測量，其原理是：根據同質性球體光散射的Mie理論，當球形化的血小板單個通過激光照射區時，儀器在兩個角度測定激光的散射強度：高角度主要測細胞的折射指數(RI)，它與細胞的密度有關；低角度主要測細胞體積的大小。血小板的體積在1～30fl，RI在1.35～1.40之間。計算機對存儲的測量信息進行分析處理，得出紅細胞和血小板計數結果。

2.6 顯微鏡白細胞分類計數：把血液制成細胞分布均勻的薄膜涂片，經瑞氏染料染色后，在顯微鏡下根據白細胞形態特征予以分類計數，得出相對比值(百分率)，并觀察細胞形態的變化。3 設備性能參數

血細胞分析儀的操作性能因儀器的種類與型號不同而異。3.1 XE-2100 XT-1800i血細胞分析儀

3.1.1 本儀器檢測血細胞的線性范圍為：WBC：(0.0～100.0)×109/L，RBC：(0.0～8.00)×1012/L；HGB：0.0～250g/L，PLT：(0.0～1000)×109/L。3.1.2 本儀器檢測血細胞的精密度為：WBC：±2.0%，RBC：±2.0%，HGB：±2.0%，PLT：±5.0%。

3.2 MEK-6108K MEK-6318K血細胞分析儀

3.2.1 本儀器檢測血細胞的線性范圍為：WBC：(0.0～99.99)×109/L，RBC：(0.00～9.99)×1012/L，HGB：0～299g/L，PLT：(10～999)×109/L。3.2.2 本儀器檢測血細胞的精密度為：WBC：±3.0%，RBC：±2.0%，HGB：±2.0%和PLT：±5%。3.3 Ac.T 5diff 血細胞分析儀

3.3.1 本儀器檢測血細胞的線性范圍為：WBC：(0.4～90.0)×109/L，RBC：(0.23～7.70)×1012/L，HGB：0～229g/L，PLT：(4～1000)×109/L。

3.3.2 本儀器檢測血細胞的精密度為：WBC：±3.0%，RBC：±2.0%，HGB：±2.0%和PLT：±6%。4 標本

4.1 臨床護士抽取患者抗凝靜脈血2～3ml。4.2 采血后立即送到臨床檢驗科。

4.3 血量不夠1ml或血液凝固、溶血或嚴重脂血標本不能作檢測。5 設備和試劑

5.1 設備：XE-2100、XT-1800i、MEK-6108K、MEK-6318K 血細胞分析儀。5.2 試劑

5.2.1 稀釋液、溶血劑和清洗液。

5.2.2 CBC試劑、DIFF試劑、消泡劑和鞘液沖洗液。5.2.3 瑞氏染液及緩沖液。

5.3 購買的試劑應放室溫保存，注意防塵、防潮。

5.4 開封后的試劑應盡快用完，變質、超過有效期的試劑不能使用。6 容器及試劑添加劑

血液標本采集的容器是一次性含EDTA-K2抗凝劑的真空采血管；血液標本必需添加劑是EDTA-K2抗凝劑。7 校準步驟

血細胞分析儀的操作過程分別見XT-2100 XT-1800i血細胞分析儀標準操作程序、Ac.T 5-diff血細胞分析儀標準操作程序、和MEK6108-K MEK6318K血細胞分析儀標準操作程序中儀器校準程序。8 操作步驟

8.1 申請單及標本編號

整理血液常規檢驗申請單及血液標本，審核合格后，對檢驗申請單和血液標本進行編號。8.2 上機測試 操作過程分別見XE-2100血細胞分析儀標準操作程序、XT-1800i血細胞分析儀標準操作程序、Ac.T 5diff血細胞分析儀標準操作程序和MEK6108-K MEK-6318K血細胞分析儀標準操作程序標準操作程序。8.3 檢驗結果的輸入

8.3.1 打開電腦，啟動“檢驗程序”，輸入用戶名及口令后，進入檢驗程序。8.3.2 單擊“檢驗”菜單，選擇“檢驗結果錄入修改”，進行檢驗結果的錄入及修改。通過申請序號進行結果的輸入，選擇“工作單號”(XE-2100 XT-1800i自動傳輸：掃入當前檢驗標識序號；Ac.T 5diff自動傳輸:掃入當前檢驗標識序號；MEK-6108K MEK-6318K測定結果和其它非自動傳輸標本：輸入病人姓名)，儀器會自動傳輸入檢測結果；同時輸入當前患者的樣品“采集時間”和“接收時間”。

8.3.3 儀器檢測結果必要進一步鏡檢標準

8.3.3.1MEK-6318K和MEK6108-K血細胞分析儀等三分類儀器檢測的標本全部需要鏡檢血涂片。

8.3.3.2XE-2100 XT-1800i和Ac.T 5diff血細胞分析儀等五分類儀器檢測結果根據本程序第18款[白細胞五分類血細胞分析儀的白細胞分類篩選原則]選出需要做血涂片檢查的血標本。

8.3.3.3 臨床醫生要求做紅細胞、白細胞、血小板等形態檢查的血標本。8.4 顯微鏡檢查操作步驟

8.4.1 制片:靜脈抗凝血標本混勻或末梢血標本，采血后推成厚薄適宜的血膜片，血膜應呈舌狀，頭、體、尾清晰可分。推好的血膜在空氣中晃動，以促使快干，以免細胞變形縮小。

8.4.2 染色:平置玻片于染色架上，滴加瑞氏染色液3～5滴，使其迅速蓋滿血膜，約1分鐘后，滴加緩沖液5～10滴，輕輕搖動玻片或對準血片吹氣，與染液充分混和，5～10分鐘后用水沖去染液，待干。

8.4.3 鏡檢:先用低倍鏡或高倍鏡閱覽全片，注意觀察血片染色情況：如有無血小板或紅細胞聚集，片尾有無巨大異常細胞，再結合儀器警告的內容，分別重點從白細胞分類、紅細胞參數和血小板參數等方面進行觀察，記錄各類細胞結果。8.5 鏡檢結果的輸入及報告確認 單擊“結果處理”菜單，選擇“報告確認”進入結果確認，通過選擇“工作單元”、“報告日期”、“單張”或“批量”后，按“提取”鍵提取檢測結果，對檢驗結果進行逐一確認。8.6 檢測過標本及廢物的處理

檢測過的血液標本、廢液及經血液標本污染的各種廢物按血液常規標本的采集與處理程序(文件編號：PLA301-LJK–CJ-001)中4.14進行處理。9 質量控制

9.1 室內質控：周一～五每天做室內質控(廠家提供的質控物)。測定過程是：從4～8℃冰箱取出全血質控物置室溫，血細胞分析儀開機后預熱20min，分別將質控物混勻后上機檢測，打印結果并與允許值范圍對比，質控合格后才能檢測病人血標本。對于失控應按質量控制程序處理，儀器質量控制當天的情況進行逐一登記。

9.2 室間質控：每月參加科內的室間質控考評2次。每年參加衛生部和WHO室間質控。

9.3 細胞分類計數的質量控制 9.3.1 影響分類計數準確性的因素 9.3.1.1 細胞分布不均

在一般涂片的尾部中性粒細胞較多，淋巴細胞較少。涂片越薄細胞分布越差，粗糙的推片所制成的血涂片，細胞分布明顯不均。當白細胞有聚集現象時，細胞分布極不規則，以致無法準確地進行分類。胞體在的細胞和幼稚細胞分布在涂片的尾部和邊緣，相反，淋巴細胞和嗜堿性粒細胞則位于涂片的頭部和體部。因此，在日常操作中，應盡量注意這些問題，減少 10 干擾因素

10.1 嚴重的黃疸或脂血使血紅蛋白結果假性增高。

10.2 紅細胞冷凝集可使紅細胞和血小板計數結果假性減低，白細胞假性增高(電阻抗法)或假性減低(激光法)和MCV假性增高。

10.3 冷凝球蛋白增高使白細胞和血小板計數結果假性增高。10.4 有血小板凝集者可使血小板計數結果假性減低。11 結果計算及測量不確定度 按儀器設計原理，只對紅細胞常數(紅細胞平均體積、紅細胞平均血紅蛋白量、紅細胞平均血紅蛋白濃度)進行計算，可根據RBC、HGB及HCT結果求出。11.1 紅細胞平均體積(MCV)MCV(fl)? 每升血液中紅細胞比積每升血液中紅細胞個數 ?HCTRBC根據RBC及HCT，由下式求出。11.2 紅細胞平均血紅蛋白量(MCH)根據RBC及HGB，由下式來求出。

MCH(pg)? 每升血液中血紅蛋白含每升血液中紅細胞個數量 ?HGBRBC11.3 紅細胞平均血紅蛋白濃度(MCHC)根據HCT及HGB，由下式來求出。

MCHC(g/L)? 每升血液中血紅蛋白含每升血液中紅細胞比積量 ?HGBHCT11.4 RDW由血細胞分析儀測量獲得，是反映周圍血紅細胞體積異質性的參數。當紅細胞通過小孔的一瞬間，計數電路得到一個相應大小的脈沖，不同大小的脈沖信號分別貯存在儀器內裝計算機的不同通道，計算出相應當體積及細胞數，統計處理而得RDW。11.5 測量不確定度

11.5.1 SF-3000血液分析儀儀器檢測血細胞測量不確定度為：WBC：±0.22×109/L(均值=3.87)、±0.46×109/L(均值=6.07)和±0.80×109/L(均值=13.27)；RBC：±0.22×1012/L(均值=2.39)、±0.24×1012/L(均值=4.18)和±0.36×1012/L(均值=6.02)；HGB：±2.60g/L(均值=82.60)、±3.66g/L(均值=129.53)和±5.48g/L(均值=168.07)；PLT：±15.66×109/L(均值=64.60)、±25.80×109/L(均值=200.40)和±40.82×109/L(均值=340.93)。11.5.2 BC-2000血液分析儀儀器檢測血細胞測量不確定度為：WBC：±0.22×109/L(均值=3.87)、±0.46×109/L(均值=6.07)和±0.80×109/L(均值=13.27)；RBC：±0.22×1012/L(均值=2.39)、±0.24×1012/L(均值=4.18)和±0.36×1012/L(均值=6.02)；HGB：±2.60g/L(均值=82.60)、±3.66g/L(均值=129.53)和±5.48g/L(均值=168.07)；PLT：±15.66×109/L(均值=64.60)、±25.80×109/L(均值=200.40)和±40.82×109/L(均值=340.93)。

小11.5.3 MEK 6108K血液分析儀儀器檢測血細胞測量不確定度為：WBC：±0.28×109/L(均值=3.20)、±0.62×109/L(均值=8.56)和±0.94×109/L(均值=15.09)；RBC：±0.22×1012/L(均值=2.30)、±0.24×1012/L(均值=4.03)和±0.42×1012/L(均值=6.03)；HGB：±2.06g/L(均值=62.80)、±4.08g/L(均值=132.70)和±6.00g/L(均值=162.23)；PLT：±20.56×109/L(均值=80.63)、±32.00×109/L(均值=203.50)和±43.67×109/L(均值=334.67)。

11.5.4 ADVIA 120血液分析儀儀器檢測血細胞測量不確定度為：WBC：±0.26×109/L(均值=3.69)、±0.32×109/L(均值=5.36)和±0.74×109/L(均值=13.32)；RBC：±0.20×1012/L(均值=2.41)、±0.22×1012/L(均值=4.13)和±0.30×1012/L(均值=5.19)；HGB：±2.90g/L(均值=82.90)、±3.66g/L(均值=130.63)和±4.38g/L(均值=1625.10)；PLT：±10.32×109/L(均值=50.17)、±24.02×109/L(均值=201.13)和±30.54×109/L(均值=329.10)。12 生物參考區間 12.1 白細胞

成年人靜脈血：3.5～10.0×109/L；手指血：4.0～10.0×109/L；新生兒：15.0～20.0×109/L；6個月～2歲：11.0～12.0×109/L。12.2 紅細胞

成年男性：4.3～5.86×1012/L；成年女性：3.77～5.17×1012/L；新生兒：6.0～7.0×1012/L。12.3 血紅蛋白

成年男性：135～180g/L；成年女性：115～155g/L；新生兒：170～200g/。的一12.4 紅細胞壓積

成年男性：0.400～0.517； 成年女性：0.367～0.467。12.5 血小板 100～300×109/L。12.6 其它參數

MCV：80 ～ 100fL；MCH：27.2～34.3pg；MCHC：320～360g/L；RDW：<0.145；PCT：男性 0.183±0.041；女性 0.198±0.042；MPV：男性 10.07±1.78fL；女性 10.24±1.58fl；PDW：16.8%±0.63%；瞬13 患者檢驗結果可報告區間 13.1 阻抗法儀器：WBC：(0.2～99.99)×109/L，RBC：(0.50～9.99)×1012/L，HGB：0～299g/L，PLT：(10～999)×109/L。

13.2 激光法儀器：WBC：(0.02～400)×109/L，RBC：(0.05～7.00)×1012/L，HGB：0～225g/L，PLT：(5～3500)×109/L。14 警告/危急值

白細胞<0.5×109/L；紅細胞<1.0×1012/L；血紅蛋白<30g/L；血小板<20×109/L。15 實驗室解釋 15.1 白細胞計數 15.1.1 白細胞生理變化

15.1.1.1 年齡：初生兒白細胞較高，一般在15×109/L左右，個別可高達30×109/L以上。通常在3～4天后降至10×109/L左右，約保持3個月，然后逐漸降低至成人水平。初生兒外周血白細胞主要為中性粒細胞，到第6～9天逐漸下降至與淋巴細胞大致相等。以后淋巴細胞逐漸增多，整個嬰兒期淋巴細胞數均較高，可達70%。到2～3歲后，淋巴細胞逐漸下降，中性粒細胞逐漸上升，到4～5歲二者又基本相等，形成中性粒細胞和淋巴細胞變化曲線的兩次交叉，至青春期時與成人基本相同。

15.1.1.2 日間變化：白細胞數在靜息狀態時較低，活動和進食后較高；早晨較低，下午較高；一日之間最高值與最低值之間可相差1倍。運動、疼痛和情緒變化、一般的體力勞動、冷熱水浴、日光或紫外線照射等，均可使白細胞輕度增高；而劇烈運動、劇痛和激動可使白細胞顯著增高。如劇烈運動，可于短時間內使白細胞高達35×109/L，以中性粒細胞為主；當運動結束后迅即恢復原有水平。這種短暫的變化，主要是由于循環池和邊緣池的粒細胞重新分配所致。

15.1.1.3 妊娠與分娩：妊娠期常見白細胞增多，特別是最后1個月，常波動于(12～17)×109/L之間，分娩時可高達34×109/L。分娩后2～5日內恢復正常。由于白細胞的生理波動很大，只有通過定時和反復觀察才有意義。15.1.2 白細胞病理變化 15.1.2.1 白細胞增高

15.1.2.1.1 急性感染：急性化膿性感染時，白細胞增高程度取決于感染微生物的種類、感染灶的范圍、感染的嚴重程度、患者的反應能力。如感染很局限且輕微，白細胞總數仍可正常，但分類檢查時可見中性粒細胞有所增高；中度感染時，白細胞總數常增高大于10×109/L，并伴有輕度核左移；嚴重感染時，白細胞總數常明顯增高，可達20.0×109/L以上，且伴有明顯的核左移。

15.1.2.1.2 嚴重的組織損傷或大量血細胞破壞：在較大手術后12～36小時，白細胞常達10.0×109/L以上，其增多的細胞成分以中性分葉核粒細胞為主。急性心肌梗塞后1～2天內，常見白細胞數明顯增高，借此可與心絞痛相區別。急性溶血反應時，也可見白細胞增高。

15.1.2.1.3 急性大出血：在脾破裂或宮外孕輸卵管破裂后，白細胞迅速增高，常達(20～30)×109/L。其增多的細胞也主要是中性粒細胞。

15.1.2.1.4 急性中毒：化學藥物如安眠藥、敵敵畏等中毒時，常見白細胞數增高，甚至可達20×109/L或更高，代謝性中毒如糖尿病酮癥酸中毒及慢性腎炎尿毒癥時，也常見白細胞增高，均以中性粒細胞為主。15.1.2.1.5 腫瘤性增高：白細胞呈長期持續增高，最常見于粒細胞性白血病，其次也可見于各種惡性腫瘤的晚期。此時不但總數常達(10～20)×109/L或更高，且可有較明顯的核左移現象，呈所謂類白血病反應。15.1.2.2 白細胞減低

15.1.2.2.1 某些感染：某些革蘭氏陰性桿菌如傷寒桿菌感染時，如無并發癥，白細胞數均減少甚至可低到2×109/L以下。一些病毒感染如流感時白細胞亦減少，可能是由于在細菌內毒素及病毒作用下使貼壁的即邊緣池粒細胞增多而導致循環池中粒細胞減少所致，也可能與內毒素抑制骨髓釋放粒細胞有關。15.1.2.2.2 某些血液病：如典型的再生障礙性貧血時，呈“三少”表現。此時白細胞可少到1×109/L以下，分類時幾乎均為淋巴細胞，乃因中性粒細胞嚴重減少所致的淋巴細胞相對增多。小部分急性白血病其白細胞總數不高反而減低，稱非白血性白血病(aleukenic leuemia)，其白細胞可<1×109/L，分類時也呈淋巴細胞相對增多，此時只有骨髓檢查才能明確診斷。

15.1.2.2.3 慢性理、化損傷：電離輻射(如X線等)、長期服用氯霉素后，可因抑制骨髓細胞的有絲分裂而致白細胞減少，故于接觸和應用期間每周應作一次白細胞計數。

15.1.2.2.4 自身免疫性疾病：如系統性紅斑狼瘡等，由于自身免疫性抗核抗體導致白細胞破壞而減少。

15.1.2.2.5 脾功能亢進：各種原因所致的脾腫大，如門脈肝硬化、班替綜合征等均可見白細胞減少。其機制為腫大的脾中的單核-巨噬細胞系統破壞了過多的白細胞；腫大的脾分泌了過多的脾素，而此種體液因子能來活促進粒細胞生長的某些因素。

15.2 白細胞分類結果異常 15.2.1 中性粒細胞

15.2.1.1 中性粒細胞增加：急性感染性化膿性炎癥，中毒(尿毒癥、糖尿病酸中毒)急性出血、急性溶血及手術后等。

15.2.1.2 中性粒細胞減少：某些傳染病(傷寒、瘧疾等)化學藥物及放射損害，某些血液病、過敏性休克、惡病質、脾功能亢進及自身免疫性疾病等。15.2.2 淋巴細胞

15.2.2.1 淋巴細胞增加：淋巴細胞性白血病，百日咳，傳染性單核細胞增多癥、水痘、麻疹、結核病、狹窄排斥反應前期，傳染病恢復期等。

15.2.2.2 淋巴細胞減少：免疫缺陷病，丙種球蛋白缺乏癥，淋巴細胞減少癥，應用腎上腺皮質激素后，放射病等。15.2.3 單核細胞

單核細胞增多：常見于亞急性細菌心內膜炎、傷寒、瘧疾、黑熱病、活動性結核、單核細胞性白血病，急性感染恢復期等。15.2.4 嗜酸性粒細胞

15.2.4.1 嗜酸性粒細胞增多：見于過敏性疾病、皮膚病、寄生蟲、血液病、猩紅熱、潰瘍性結腸炎、X線照射后，脾切除、傳染病恢復期等。

15.2.4.2 嗜酸性粒細胞減少：多見于傷寒、副傷寒，以及應用腎上腺皮質素或促腎上腺皮質素后。15.2.5 嗜堿性粒細胞

嗜堿性粒細胞增多：見于慢性粒細胞白血病、淋巴網細胞瘤、脾切除后等，惡性腫瘤、嚴重傳染病、敗血病、中毒(藥物或重金屬)大面積燒傷等。嚴重感染中性?？沙霈F毒性顆粒、空泡、Dohle氏體，核棘突，退行性變及細胞大小不均等變化。

15.3 紅細胞結果異常 15.3.1生理性變化

年齡與性別的差異：初生兒由于出生前以彌散方式從母體血液獲得氧氣，通常處于生理性缺氧狀態，故紅細胞明顯增高，但在出生2周后就逐漸下降。小兒生長發育時鐵供應不足亦可引起貧血。男性兒童在6～7歲時最低，隨著年齡增大而逐漸上升，到25～30歲時達高峰，30歲后隨著年齡增高而逐漸下降，直到60歲尚未停止。在女性兒童也隨年齡逐漸增高，到13～15歲時達最高值，而后受到月經、內分泌等因素影響逐漸下降，到21～35歲維持最低水平后又逐漸增高與男性水平相近。男女兩性的紅細胞計數在15～40歲期間差異明顯，主要可能與在此期間，男性雄激素水平較高，而睪酮有促進紅細胞造血作用有關。精神因素：感情沖動、興奮、恐懼、冷水浴刺激均可使腎上腺素增多，導致紅細胞暫時增加。

劇烈體力運動和勞動：主要由于氧需要量增加，引起相對缺氧。一般成人在安靜時全身每分鐘耗氧0.3～0.4L，肌肉運動時可增加到2～2.5L，最高可達到4～4.5L，此時由于紅細胞生成素生成增加而骨髓加速釋放紅細胞，導致紅細胞增多。氣壓降低：因缺氧刺激，紅細胞可代償性增生。高山地區居民和登山運動員紅細胞數均高于正常，此因大氣稀薄、氧分壓低，機體紅細胞生成素水平增高，引起骨髓產生更多的紅細胞所致。

妊娠中、后期：為適合胎盤循環的需要，通過神經、體液調節，孕婦的血漿容量明顯增加而引起血液稀釋。15.3.2 紅細胞增高

15.3.2.1 相對性增高：常見于劇烈嘔吐、嚴重腹瀉、大面積燒傷、大量出汗、多尿和水的攝入量顯著不足的患者。

15.3.2.2 絕對性增高：與組織缺氧有關?？梢鹄^發性紅細胞增多，如慢性肺源性心臟病、發紺性先天性心臟病，慢性一氧化碳中毒，登山病等。15.3.2.3 真性紅細胞增多癥，紅細胞可達(7～10)×1012/L 15.3.3 紅細胞減少

15.3.3.1 生理性貧血：妊娠期因血漿量相對增多，故紅細胞相對減少。3個月的嬰兒至15歲的兒童，因生長發育迅速而致造血原料相對不足，紅細胞和血紅蛋白可較正常人低10%~20%。老年人由于骨髓造血功能逐漸減低，均可導致紅細胞和血紅蛋白含量減少。

15.3.3.2 病理性減少：①紅細胞減少所致的貧血：一是因骨髓造血功能衰竭，如再生障礙貧血、骨髓纖維化等伴發的貧血；二是因造血物質缺乏或利用障礙引起的貧血，如缺鐵性貧血、鐵粒幼細胞性貧血、葉酸及維生素B12缺乏所致的巨幼細胞性貧血。②因紅細胞膜、酶遺傳性的缺陷或外來因素造成紅細胞破壞過多導致的貧血，如遺傳性球型紅細胞增多癥、地中海性貧血、陣發性睡眠性血紅蛋白尿、異常血紅蛋白病、免疫性溶血性貧血、心臟體外循環的大手術及一些化學、生物因素等引起的溶血性貧血。③失血：急性失血或消化道潰瘍、鉤蟲病等慢性失血所致貧血。紅細胞計數醫學決定水平：高于6.8×1012/L，應采取相應的治療措施；低于3.5×1012/L為診斷貧血的界限，應繼續尋找病因；低于1.5×1012/L應考慮輸血。15.4 紅細胞形態 紅細胞形態變化見于： 紅細胞大小不一

小紅細胞：提示血紅蛋白合成障礙，見于缺鐵性貧血、珠蛋白生成障礙性貧血和遺傳性球形紅細胞增多癥。

大紅細胞：常見于巨幼紅細胞性貧血，也可見于溶血性貧血、惡性貧血等。巨紅細胞：最常見于葉酸及維生素B12缺乏所致的巨幼細胞性貧血。紅細胞大小不均：常見于嚴重的增生性貧血、巨幼細胞性貧血。紅細胞內血紅蛋白含量改變

正常色素性：除見于正常人外，還見于急性失血、再生障礙性貧血和白血病等。低色素性：常見于缺鐵性貧血、珠蛋白生成障礙性貧血、鐵粒幼細胞性貧血、某些血紅蛋白病。

高色素性：最常見于巨幼細胞性貧血。

多色性：多色性紅細胞增多提示骨髓造血功能活躍，尤見于溶血性或急性失血性貧血。

細胞著色不一：多見于鐵粒幼紅細胞性貧血。紅細胞形狀改變

球形細胞：主要見于遺傳性和獲得性球形紅細胞增多癥(如自身免疫性貧血或直接理化損傷如燒傷等)。

橢圓形細胞：見于遺傳性橢圓形紅細胞增多癥。

靶形紅細胞：常見于各種低色素性貧血，尤見于珠蛋白生成障礙性貧血、HbC病，也見于阻塞性黃疸、脾切除后狀態。

口形細胞：常見于口形紅細胞增多癥，小兒消化系統疾患引起的貧血，也可見于乙醇中毒，某些溶血性貧血及肝病患者等。鐮形細胞：主要見于鐮狀細胞性貧血。

棘形細胞：多見于遺傳性或獲得性β-脂蛋白缺乏癥，可高達70%～80%；也可見于脾切除后、酒精中毒性肝臟疾病及尿毒癥等。新月形紅細胞：見于某些溶血性貧血，其意義不明。

淚滴形細胞：多見于貧血、骨髓纖維化癥時，偶見于正常人。

裂紅細胞：見于彌散性血管內凝血、微血管病性溶血性貧血、重型珠蛋白生成障礙性貧血、巨幼細胞性貧血、嚴重燒傷。正常人血涂片中裂片細胞小于2%。紅細胞形態不整：此種細胞在某些感染或嚴重貧血時多見，最常見于巨幼細胞性貧血。異形紅細胞產生的原因尚未明，有人認為是物理因素所致。

有核紅細胞：最常見于嚴重的溶血性貧血、新生兒溶血性貧血、自身免疫性溶血性貧血、巨幼細胞性貧血；各種急、慢性白血病及紅白血病和慢性骨髓增生性疾病如骨髓纖維化。紅細胞內出現異常結構

嗜堿性點彩紅細胞：見于中毒患者(如鉛、汞等金屬中毒)及各種增生活躍性貧血如溶血性貧血、巨幼細胞性貧血等。

豪喬小體：見于脾切除術后、無脾癥、脾萎縮、脾功能低下、紅白血病和某些貧血患者；在巨幼細胞貧血時，更易見到。

卡波氏環：可見于白血病、巨幼細胞性貧血、增生性貧血、鉛中毒或脾切除后。寄生蟲：當瘧原蟲等感染時，可見紅細胞胞質內相應的病原體。15.5 血紅蛋白異常

血紅蛋白的增減臨床意義大致與紅細胞的增減意義相似，但血紅蛋白更準確反映貧血的程度。血紅蛋白的減少與紅細胞的減少程度不一定呈正比例，一是在小紅細胞貧血時，由于單個紅細胞血紅蛋白的含量少于正常，所以血紅蛋白減少的程度較紅細胞減少的程度更為明顯，如缺鐵性貧血、消化性潰瘍、腸息肉、痔瘡、月經過多、鉤蟲病等慢性反復出血等；二是在大紅細胞性貧血減少的程度較

血紅蛋白更為嚴重，如缺乏維生素B12或葉酸引起的營養不良性貧血及肝硬化性貧血等；三是在大出血時，血紅蛋白減少的程度基本上與紅細胞減少相一致，如消化道、肺部大出血及其他原因引起的大出血，再生障礙性貧血、純紅細胞再生障礙性貧血。15.6 紅細胞比積

紅細胞比積是用于計算紅細胞3個平均指標的參數的要素之一，有助于貧血診斷和分類；可以評估血漿容量有無增減或稀釋濃縮程度，有助于某些疾病治療中補液量的控制，以及了解體液平衡情況。15.6.1 紅細胞比積增高

見于各種原因所致的血液濃縮，如大量嘔吐、大手術后、腹瀉、失血、大面積燒傷以及真性紅細胞增多癥(可達0.80)和繼發性紅細胞增多癥等。15.6.2 紅細胞比積減低

見于各種貧血。由于貧血種類不同，紅細胞比積減少的程度并不與紅細胞計數值完全一致。

15.7 紅細胞平均指標

臨床上將紅細胞3個平均測定的指標作為貧血的形態學分類依據(表1)。表1 貧血的紅細胞形態學分類

貧血類型 MC正細胞貧血 正增減減

MCH MCHV

C

常見原因或疾病

正常 正常 MM、急性失血性貧血、某些溶增高 正常 各種造血物質缺乏或利用不減低 正常 慢性感染、慢性肝腎疾病性貧減低 減低 缺鐵性貧血及鐵利用不良貧 大細胞貧血

單純小細胞 小細胞低色15.8 紅細胞體積分布寬度

紅細胞體積分布寬度(red blood cell volume distribution width，RDW)是一個較新的紅細胞參數，由血液分析儀根據紅細胞體積分布的直方圖導出，反映所測標本中紅細胞體積大小的異質程度，常用變異系數(CV)表示。

進行貧血形態學新的分類：1983年Bessman提出用MCV和RDW兩項參數作為貧血的形態學分類的新指標。根據不同病因引起貧血的紅細胞形態特點的不同，可將貧血分成6類(表2)，新的分類法較傳統分類法可能更全面，對貧血的病因分析和鑒別診斷具有更大意義。

貧血類型 MCV/RDW

特征 MCV減少，常見原因或疾病

小細胞均小細胞不正細胞均

輕型珠蛋白生成障礙性貧血、某缺鐵性貧血、β-珠蛋白生成障

MCVMCV、再障、白血病、某些慢性肝病、缺鐵性貧血(IDA)的篩選診斷和療效觀察：RDW增高對缺鐵性貧血診斷的靈敏度達95%，但特異性不強，可作為缺鐵性貧血的篩選指標。缺鐵性貧血時RDW增高，尤其是MCV尚處于參考值范圍時，RDW增高更是診斷缺鐵性貧血的指征；當MCV減小時，RDW增高更為顯著；給予鐵劑治療有效時，RDW將比給藥前更大。這是因為患者補鐵后，網織紅細胞增多并釋放入血，與給藥前的小紅細胞并存的緣故，故RDW先增大，隨著正常紅細胞的增多和小紅細胞的減小，RDW逐漸降至參考范圍。

鑒別缺鐵性貧血和β-珠蛋白生成障礙性貧血：Bessman曾分析了兩類貧血患者RDW變化，缺鐵性貧血患者100%RDW增高，而88%輕型β-珠蛋白生成障礙性貧血患者的RDW正常，提示RDW可作為兩類貧血的鑒別診斷指標。15.9 血小板 15.9.1 生理性變化

正常人血小板數隨時間和生理狀態變化：如一天之內可增減6～10%，午后略高于早晨；春季較冬季低；平原居民較高原居民低；月經前減低，月經后增高；妊娠中晚期增高，分娩后即減低；運動、飽餐后增高，休息后恢復。

15.9.2 血小板數增高：①一過性增高，見于急性大出血及溶血之后。②持續性增高，見于真性紅細胞增多癥、出血性血小板增多癥。③慢性粒細胞性白血病、多發性骨髓瘤及許多惡性腫瘤的早期?？梢娧“逶龆?。

15.9.3 血小板數減少：①血小板產生減少，見于造血功能受到損害，如再生障礙性貧血、急性白血病、急性放射病。②血小板破壞亢進，見于原發性血小板減少性紫癜、脾功能亢進和進行體外循環時。③血小板消耗過多，如彌散性血管內凝血、血栓性血小板減少性紫癜等。16 安全性預警措施

血液標本的運輸必須保證運送過程中的生物安全，防止溢出。血液標本溢出后，應該立即對污染的環境和設備進行消毒處理。對標明有傳染性疾病的血液標本應特別防護，以不污染環境或保護工作安全為前提。

在進行血液分析的一切操作活動中，應按《實驗室安全管理》程序執行。在進行操作前，首先應采取必要的保護性措施如穿戴保護性外套、手套等。

與血液標本接觸的一切器皿、儀器組裝/拆卸組合零件都應視為污染源，因此操作人員不小心接觸了這種污染源時，應立即用清水沖洗被污染區域并進行消毒處理。

如果操作人員的皮膚或衣物上沾到了血液及廢液，應立刻用清水沖洗并進行消毒處理。如果眼睛被濺入血液及廢液，用大量的清水沖洗并采取必要的醫療措施。

如血液標本采用開蓋程序測試，開蓋時應防止氣霧膠污染環境。

所有檢查過的血液樣本及有關的廢棄物，都會給您帶來潛在的危險或生物污染。所有廢棄樣本及廢棄物的處理方法同血液標本的處理程序。17 變異潛在來源

嚴重的黃疸或脂血標本可使血紅蛋白結果假性增高；

標本溶血可使紅細胞結果假性減低、血小板計數結果假性增高；

紅細胞冷凝集可使紅細胞和血小板計數結果假性減低，白細胞假性增高(電阻抗法)或假性減低(激光法法)和MCV假性增高；

冷凝球蛋白或冷纖維蛋白增高使白細胞和血小板計數結果假性增高 有血小板凝集者可使血小板計數結果假性減低； 試劑的溫度；

檢測器微孔不完全堵塞；

標本采集后放置的環境溫度過高、時間過長； 試劑變質或過了有效期而未發現等。白細胞五分類血細胞分析儀的白細胞分類篩選原則 18.1 血液病病人，無論血細胞計數結果和細胞分布圖是否正常，一律做血涂片鏡檢。

18.2 無論初診或復診病人，只要白細胞、紅細胞/血紅蛋白和血小板計數結果正常，白細胞散射圖、紅細胞和血小板直方圖均正常且無報警者，可不做血涂片鏡檢。

18.3 初診病人，其白細胞、紅細胞/血紅蛋白、血小板計數結果，白細胞散射圖、紅細胞和血小板直方圖中有一項異常或報警時，均需做血涂片鏡檢。

18.4 復診病人，其血細胞計數結果與前一次結果無明顯變化，但白細胞散射圖異常且有報警時，需做血涂片鏡檢。

18.5 復診病人，其血細胞計數結果與前一次檢測結果相比有變化，但與臨床診斷或治療相符；而且白細胞散射圖正常無報警時，可不做血涂片鏡檢。19 異常結果處理

血細胞分析儀測試的血常規結果異常需與臨床診斷相符，不符合的結果應復查。20 報告時間與標本保存

20.1 病房患者的血常規檢驗結果報告單應于當日下午4點前由衛生員發回病房科室。

20.2 檢驗后的血常規標本應放置室溫保存至次日上午8點丟棄。21 實驗方法的溯源

見XT-2100、MEK-6108K、XT-1800i和5-diff血細胞分析儀使用說明書。22 參考文獻

①XT-2100、XT-1800i、MEK-6108K和5-diff血細胞分析儀使用說明書。②“2013例北京市正常成年人靜脈血血細胞正常參考范圍調查”《中華醫學檢驗雜志》 1996年第3期。

③葉應嫵，王毓三主編.全國臨床檢驗操作規程.中華人民共和國衛生部醫政司.南京.第二版.1997。

第三篇：血細胞分析鏡檢規則

血細胞分析血細胞分析血細胞分析鏡檢鏡檢規則

1.有無白細胞分類結果.血細胞分析無分類結果必須顯微鏡檢查,且要給出白細胞形態和分類計數結果.2.超出白細胞計數上限和下限 WBC<2.5*109

WBC>25*109

3.白細胞自動分類結果超出檢驗結果上限和下限

1）五分類：MON>15%,EOS>15%,BASO>3%,LYM>60%(成人)>80%(兒童),NEU>85% 2）三分類：MON>10%, LYM>60%(成人)>80%(兒童),NEU>85% 4.儀器分析結果是否有報警提示.1)大血小板、小血小板凝集，小紅細胞、紅細胞碎片、有核紅細胞、異形淋巴細胞、幼稚細胞。2)計數結果后有“*”號提示。3)血小板后有“*”號提示。5.血紅蛋白MCV、RDW異常。Hb<70g/L,MCV或RDW嚴重異常。

6.血小板數量減少，PLT<80*109/L,確定假性血小板減少。

7.同一病人近日WBC總數變化情況，3天內WBC總數差>5.0*109/L。8.同一病人上一次分類計數時間，24小時內不必再計數。9.醫生申請要求鏡檢的標本。

10.各種特殊病人（化療、放療、孕婦）。

第四篇：檢驗科血液組血細胞分析質量目標

檢驗科血液組血細胞分析質量目標

檢測項目

WBC

RBC

Hb

Hct

PLT

WCV

MCH

MCHC 變異系數

≤4.0%

≤2.0%

≤2.0%

≤3.0%

≤8.0%

≤2.0%

≤2.0%

≤2.0%

行標批內精密度≤4.0%

≤2.0%

≤1.5%

≤3.0%

≤5%

≤2.0%

≤2.0%

≤2.5% 行標批間精密度≤6.0%

≤2.5%

≤2.0%

≤4.0%

≤8.0%

≤2.5%

≤2.5%

≤3.0%

衛生部臨檢中心室間質評允許最大誤差

檢測項目

WBC

RBC

Hb

Hct

PLT

WCV

MCH

MCHC 變異系數

≤15.0%

≤6.0%

≤6.0%

≤9.0%

≤20%

≤7.0%

≤7.0%

WS/T406-2012 5.3 批內精密度(最佳條件）

表4

批內精密度檢測要求

檢測項目

檢測范圍

變異系數

WBC

4.0×109/L—10.0×109/L

≤ 4.0% RBC

3.5×1012/L--5.5×1012/L

≤ 2.0% Hb

110g/L---160g/L

≤ 1.5% Hct

35%

---55%

≤ 3.0% PLT

100×109/L---300×109/L

≤ 5.0% MCV

80fl---100fl

≤ 2.0% MCH

27pg---34pg

≤ 2.0% MCHC

320PG---360PG

≤ 2.5% WS/T406-2012 5.4 批間精密度

表 5 日間精密度檢測要求

檢測項目

WBC

RBC

Hb

Hct

PLT

WCV

MCH

MCHC 變異系數

≤6.0%

≤2.5%

≤2.0%

≤4.0%

≤8.0%

≤2.5%

≤2.5%

≤3.0%

制定的依據2：

制定的依據3：累積標準差和變異系數

8.0%

≤

第五篇：理化樣品分析的質量保證.

理化樣品分析的質量保證

理化樣品分析的目的是利用可靠的、簡便的方法和靈敏度高的儀器設備，將樣品中的有效成分和有毒有害成分快速測定出來，并能準確地進行定量分析或定性分析，為疾病預防控制、衛生監督和衛生評價學工作提供可靠的實驗數據。理化樣品分析的質量控制是保證測試結果準確無誤的一種重要手段。

質量保證即確認測試數據達到預定目標的步驟，理化樣品分析數據質量保證是一個復雜的系統工程，它包括既有區別又有聯系的質量控制和質量評定兩個方面，貫穿于從采樣、收樣、取樣、測試至報告的實驗室樣品分析全過程中。質量控制［1，2］

質量控制即為產生達到質量要求的測定所遵循的步驟。質量控制技術的關鍵：（1）較高的人員素質：實驗人員的責任心、基礎水平、技術能力和經驗是保證測定質量的首要條件。（2）測量儀器設備能滿足分析要求：分析測試儀器不僅要滿足方法檢出限的要求，而且要處于適用狀態，即按規定進行周期檢定、校準、保養、日常保管和正確使用。（3）量值溯源：量值必須準確可靠，并具有良好均勻性和穩定性。工作標準溶液的濃度準確與否，將直接影響測量結果的準確度。因此，要保證不間斷的溯源鏈，使用標準物質時，必須向提供標準物質的部門（供應商）索取有效的標準物質證書，保證標準物質使用的可靠性和可溯源性。（4）有一個好的實驗室操作基礎并嚴格執行標準操作步驟：實驗室操作包括測試環境的合理、清潔、儀器設備的使用記錄、樣品處理、試劑控制、玻璃器皿的清洗等；標準操作步驟即標準分析方法所闡述的操作步驟。（5）有一套嚴格的實際有效的規章制度：包括樣品、儀器設備、各類實驗室管理制度和實驗數據、報告的審核制度，應歸納在質量管理手冊和標準操作規程中。

1.1 樣品的采集與管理

樣品是實驗對象，分析的前提，要求有惟一性、真實性和安全性特征。樣品的采集應具有代表性：取決于現場科室采樣人員的職責和技能，樣品的采集、保存與運輸的技術和措施。如果采集的樣品不具有代表性及真實性或采集的樣品不能保證質量，就會造成檢驗結果數據失控。

樣品管理是一項看似簡單而實際易出問題的工作。作為實驗室樣品分析的質量控制部分，首先要求有一套嚴格的樣品管理制度、素質較高的管理員、符合要求的樣品存放室和細致的樣品交接手續。采集的樣品數量應符合檢驗要求，樣品要有專人接收和登記，由接樣人將樣品編好號后送實驗室交檢驗人員，對不合格的送檢樣品應拒收并向送檢人員說明拒收原因，告知正確送檢樣品的要求，重新采樣送檢。

1.2 取樣的質量控制

取樣的質控關鍵是要注意樣本的均勻性和穩定性，即被測特性在空間分布和隨時間變化的問題。

1.3 檢驗方法的選擇

測試前應核對檢測項目和指標，查閱標準分析方法和有關檢驗資料，一般采用現行有效的國家標準方法，無國家標準方法而采用其他方法進行檢測的，要知道該方法是否已通過驗證、鑒定和審批，對該分析方法誤差的預測與控制，以保證即使沒有很多經驗的檢驗人員也能得到可以接受的分析結果。

1.4 分析測試的內控

樣品分析測試幾乎涉及了質量保證全部內容。在實際測試工作中誤差無時不有，無處不在，質控的根本目的就是要控制誤差。清楚誤差的來源、分類、轉化等概念，并從分析者本身、測試環境、試驗用水、試劑、器皿及每一個分析測試的步驟中減少分析空白值的引入，就是要杜絕過失誤差，及時發現并消除系統誤差，減小隨機誤差。

重要的工作：（1）實驗室基礎工作—反映出實驗室管理水平：如測試環境滿足分析項目的要求，儀器設備檢查核準，實驗用水、試劑的純度、級別達到要求等。（2）分析方法的質控—反映操作者個人技術水平：即便是標準分析方法，不同的操作者得出分析結果的不確定度是不同的。應要求做好分析方法的校正曲線、精密度、檢出限、方差齊性檢驗(確定線性有效范圍)、方法AQC試驗(誤差的估計)、質控圖(判斷測量系統是否處于控制狀態之中)等工作。

1.5 數據報告的質量審核

1.5.1 原始記錄

在檢驗過程中，要嚴格操作規程，按操作方法中的程序進行操作，不得隨意改動操作程序。并做到同時做好原始記錄，原始記錄的內容應為：（1）檢驗樣品名稱、編號、樣品始檢日期和檢驗結束日期；（2）樣品檢驗項目和檢驗方法；（3）檢測儀器的編號、名稱、型號、工作條件；（4）影響實驗結果的檢測環境條件；（5）檢測過程中所出現的問題；（6）被檢樣品原始數據的記錄和數據處理結果；（7）檢驗人員的簽名和校核人員的簽名及日期。