第一篇：分子生物學實驗室需要的儀器配置

分子生物學實驗室需要的儀器配置

(1)培養箱 在分子生物學試驗中，有很多反應都是在特定溫度下進行的，這時就需要一個控溫的裝置。例如：用于細菌的平板培養，我們通常設定為37℃于培養箱倒置培養；其他分子生物學實驗如酶切等需要25℃，30℃，37℃等條件。

(2)冰箱 冰箱是實驗室保存試劑和樣品必不可少的儀器。分子生物學實驗中用到的試劑有些要求是4度保存，有些要求是負20度保存，實驗人員一定要看清試劑的保存條件，放置在恰當的溫度下保存。具體來說，不同溫度下保存的物品如下： a.4℃適合儲存某些溶液、試劑、藥品等。

b.-20℃適用于某些試劑、藥品、酶、血清、配好的抗生素和DNA、蛋白質樣品等。c.-80℃適合某些長期低溫保存的樣品、大腸桿菌菌種、純化的樣品、特殊的低溫處理消化液，感受態等的保存。

d.0-10℃的層析冷柜適合低溫條件下的電泳、層析、透析等實驗。

(3)搖床 搖床是實驗室常用儀器，一般有常溫型和低溫型兩種。對于分子生物學實驗室，如果能配置低溫型搖床，就可以適應不同的實驗需求。例如：用于大腸桿菌，酵母菌等生物工程菌種的振蕩培養及蛋白的誘導表達，培養通常為28度和37度，誘導表達需要20-37度；在感受態的制備過程中，需要有18度的溫度控制；用于蛋白凝膠的染色脫色時振蕩，常溫使用；用于大腸桿菌常規轉化時振蕩復蘇，常為37度。對于控制溫度低于室溫時，我們需要低溫型搖床來控溫。

(4)水浴鍋 水浴鍋也是一種控溫裝置，水浴控溫對于樣品來說比較快速且接觸充分。例如，用于42度的大腸桿菌轉化時的熱激反應；用于DNA雜交過程中水浴控溫。

(5)烘箱 烘箱是用于滅菌和洗滌后的物品烘干。烘箱有不同的控溫范圍，用戶可以根據實驗需求進行選擇。例如，有些塑料用具只能在42-45℃的烤箱中進行烘干；用于RNA方面的實驗用具，需要在250℃烤箱中烘干。

(6)純水裝置 純水裝置包括蒸餾水器和純水機。蒸餾水器的價格便宜，但在造水過程中需要有人值守；純水機價格高些，但是使用方便，可以儲存一定量的純水。純水使用也有不同的級別，一般實驗用水需要純水，用于PCR、DNA測序、酶反應均需要超純水。

(7)滅菌鍋 分子生物學所用到的大部分實驗用具都應嚴格消毒滅菌。包括實驗物品、試劑、培養基等。滅菌鍋也有不同大小型號，有些是手動的，有些是全自動的。用戶需要根據自己的需要選購。

(8)天平天平用于精確稱量各類試劑。實驗室常用的是電子天平，電子天平按照精度不同有不同的級別。(9)液體量器 液體量器用于精密量取各類液體。常見的液體量器有量筒、移液管、微量取液器、刻度試管、燒杯。

(10)pH計 用于配置試劑時精確測量PH值，從而保證配置的溶液的精確性。有時也需要利用pH計測定樣品溶液的酸堿度。

(11)分光光度計 分光光度計通過測定吸光值，從而用于分析樣品核酸和蛋白的含量及純度；同時也可以測定培養菌液的濃度。

(12)離心機 離心機有冷凍和常溫之分。主要用于收集微生物菌體、細胞碎片以及其他沉淀物。有些樣品由于在常溫下不太穩定，需要低溫環境。例如在感受態制備過程中必須保證低溫環境，所以需要冷凍離心機。

(13)超凈工作臺 分子生物學中凡是涉及對細菌的操作均需在超凈工作臺下完成，還有感受態制備，轉化反應等，都需要無菌的環境。

(14)電泳系統 實驗室常用的電泳主要是三種：水平電泳用于核酸DNA/RNA的瓊脂糖電泳檢測；垂直電泳用于蛋白的聚丙烯酰胺凝膠電泳檢測；轉印電泳用于將蛋白轉印到膜上做western檢測。

(15)PCR儀 PCR儀有不同的類型，分別用于不同的實驗。普通和梯度PCR儀用于基因克隆和基因檢測過程中DNA/RNA的擴增。熒光定量PCR儀用于核酸定量分析、基因表達差異分析、單核苷酸多態性檢測、甲基化檢測。原位PCR儀用于鑒定和定位帶有靶序列的細胞在組織中的位置。

(16)凝膠成像分析系統/紫外檢測儀 凝膠成像系統用于對染色后的核酸瓊脂糖電泳膠和蛋白聚丙烯酰胺凝膠的觀察和拍照，有些可以進行切膠操作。紫外檢測儀可以用于對染色后的核酸瓊脂糖電泳膠的觀察，膠回收時切膠操作，但是不能連接電腦拍照。

(17)制冰機 實驗室常用的是雪花制冰機，制冰機一般是按每日制冰量分成不同型號。分子實驗室中制造大多數核酸、蛋白質的實驗操作所需的低溫環境，以減少核酸酶或蛋白質酶的水解。感受態制備也需要長時間冰浴。

(18)磁力攪拌器 在配置試劑過程中，有些試劑較難溶解，這時需要借助磁力攪拌器。磁力攪拌器可以加速溶解固體內容物。磁力攪拌器一般帶加熱功能。

(19)生物安全柜 分子實驗中涉及的試劑和樣品很多是有毒的，對于操作人員來說傷害較大。為了防止有害懸浮微粒、氣溶膠的擴散，可以利用生物安全柜對操作人員、樣品及樣品間交叉感染和環境提供安全保護。

(20)微波爐和電爐 用于溶液的快速加熱，電泳瓊脂糖凝膠的加熱溶化配制，固體培養基的加熱溶化。

(21)液氮罐 分子生物學實驗中感受態細胞的制備需要液氮處理。感受態的保存也可以存于液氮中。

(22)微管移液器 微管移液器也有不同型號，是用于準確量取特定體積的溶液。

第二篇：分子生物學實驗室常用儀器及使用方法

實驗一

分子生物學實驗室常用儀器及使用

事實證明，在科學飛速發展的今天，無論從事哪個領域的研究，要想突破，除了有良好的理論基礎外，更重要的是依賴于先進的技術和優良的儀器設備以及良好的研究環境。一個標準的分子生物學實驗室除了具有一般生物學實驗室的常規儀器設備外，還具有一些特殊用途的儀器，這些儀器一般較精密，價格昂貴。下面介紹這些儀器的使用方法和注意事項。

一、冷凍離心機

低溫分離技術是分子生物學研究中必不可少的手段。基因片段的分離、酶蛋白的沉淀和回收以及其它生物樣品的分離制備實驗中都離不開低溫離心技術，心機成為分子生物學研究中必備的重要儀器。室的高速冷凍離心機為GL-20G-Ⅱ型（上海安亭）×10ml和12×1.5ml。極限轉速20000rpm。

1.安裝與調試

離心機應放置在水平堅固的地面上，應至少距離中，周圍空氣應呈中性，且無導電性灰塵、易燃氣體和腐蝕性氣體，環境溫度應在之間，相對濕度小于80%。試轉前應先打開蓋門，用手盤動轉軸，輕巧靈活，無異常現象方可上所用的轉頭。轉子準確到位后打開電源開關，然后用手按住門開關，動后立即停止，并觀察轉軸的轉向，若逆時針旋轉即為正確，機器可投入使用。2.操作程序

（1）插上電源，待機指示燈亮；打開電源開關，調速與定時系統的數碼管顯示的閃爍數字為機器工作轉速的出廠設定，溫控系統的數碼管顯示此時離心腔的溫度。

（2）設定機器的工作參數，如工作溫度，運轉時間，工作轉速等。

（3）將預先平衡好的樣品放置于轉頭樣品架上，關閉機蓋。

（4）按控制面板的運轉鍵，離心機開始運轉。預先設定的值。

（5）在預先設定的運轉時間內（不包括減速時間）定的減速時間內降至零。

（6）按控制面板上的停止鍵，數碼管顯示機器已準備好下一次工作。

3.注意事項

（1）離心機應始終處于水平位置，外接電源系統的電壓要匹配，并要求有良好的接地線，機器不使用，要拔掉電源插頭。

（2）開機前應檢查轉頭安裝是否牢固，機腔中有無異物掉入。

（3）樣品應預先平衡，使用離心筒離心時離心筒與樣品應同時平衡。

（4）揮發性或腐蝕性液體離心時，應使用帶蓋的離心管，并確保液體不外漏以免腐蝕機腔或造成事故。

在國內，有多個廠家生產冷凍離心機，落地式。配有角式轉頭：10cm在預先設定的加速時間內，其運速升，離心機開始減速，其轉速在預先設dedT，數秒鐘后即顯示閃爍的轉速值，這時1

本實驗6×50ml、120～30℃

至 因此低溫冷凍離 以上且具有良好的通風環境再按運轉鍵，轉

（5）除工作溫度、運轉速度和運轉時間外，不要隨意更改機器的工作參數，以免影響機器性能。轉速設定不得超過最高轉速，以確保機器安全運轉。

（6）使用中如出現0.00或其它數字，機器不運轉，應關機斷電，10秒鐘后重新開機，待所設轉速顯示后，再按運轉鍵，機器將照常運轉。

（7）不得在機器運轉過程中或轉子未停穩的情況下打開蓋門，以免發生事故。

（8）每次操作完畢應做好使用情況記錄，并定期對機器各項性能進行檢修。

二、電泳儀

電泳技術是分子生物學研究不可缺少的重要手段。帶電泳大類，自由界面電泳不需支持物，泳目前已很少使用。區帶電泳需用各種類型的物質作為支持物，纖維薄膜、非凝膠性支持物、是瓊脂糖凝膠電泳。應用電泳法可以對不同物質進行定性或定量分析，組份分析或單個組份提取制備。下面以為例介紹其使用方法。

1.使用方法

（1）按電源開關，顯示屏出現“歡迎使用同時系統初始化，蜂鳴

U:

0V

U＝

I:

0mA

I ＝

P:

0W

P＝

T:

00:00

T＝

其中:左側大寫Mode(模式)：STD(標準

（2）設置工作程序。用鍵盤輸入新的工作程序。例如，要求工作電壓I限制在200mA以內，功率動關掉輸出。則操作步驟如下：

①按“模式”鍵，將工作模式由標準（凝膠性支持物及硅膠―4聲，設置常設置。屏幕轉成參數設置狀態，見圖一：

100V

50mA

｜

50W

｜ 01:00

｜U: I: P: T:)；TIME(定時W限制在 電泳一般分為自由界面電泳和區如等速電泳、密度梯度電泳及顯微電泳等，這類電G薄層等，分子生物學實驗中最常用的DYY-12型電腦三恒多用電泳儀（北京六一儀器廠）DYY-12型電腦三恒多用電泳儀?”等字樣后，Mode：

STD

中間部分顯示程序的常設值)；VH（伏時）；STEP（分步）100W以內，時間T為3STD）轉為定時（TIME）2

醋酸或將一定混合物進行（預置值）。U＝1000V，電流20分，并且到時間自常用的支持物有濾紙、｜

為電泳時實際值； 小時 模式。每按一下模式鍵，其工作方式按下列順序改變：

STD?TIME?VH?STEP?STD。

②先設置電壓U，按“選擇”鍵，先將其反顯，然后輸入數字鍵即可設置該參數的數值。按數字1000,則電壓即設置完成。

③設置電流I，按“選擇”鍵，先使I反顯，然后輸入數字200。

④設置功率P，按“選擇”鍵，先使P反顯，然后輸入數字100。

⑤設置時間以按“清除”鍵，再重新輸入。

⑥確認各參數無誤后，按“啟動”鍵，啟動電泳儀輸出程序。在顯示屏狀態欄中顯示Start!并蜂鳴至設置值。同時在狀態欄中顯示“壓輸出。在狀態欄最下方，顯示實際的工作時間（精確到秒）

⑦每次啟動輸出時，儀器自動將此時的設置數值存入“要調用時可以按“讀取”鍵，再按“出執行。

⑧電泳結束，儀器顯示：

2.注意事項

(1)U、I、P三個參數的有效輸入范圍是：

(2)一般情況下，當的地方，可以用萬用表的歐姆檔逐段測量。

(3)如果輸出端接多個電泳槽，則儀器顯示的電流數值為各槽電流之和，此時應選擇穩壓輸出，以減小各槽的相互影響。

(4)注意保持儀器的清潔，不要遮擋儀器后方進風通道。嚴禁將電泳槽放在儀器頂部，避免緩沖液灑進儀器內部。

(5)本儀器輸出電壓較高，使用中應不避免接觸輸出回路及電泳槽內部，以免發生危險。

(6）長期不用儀器，應放置在干燥通風的清潔環境中保存。

三、分析天平

分析天平是定量分析工作中不可缺少的重要儀器，充分了解儀器性能及熟練掌握其使用方 T，按“選擇”鍵，先使 4聲，提醒操作者電泳儀將輸出高電壓，“No Load！時，首先應關機檢查電極導線與電泳槽之間是否有接觸不良

T反顯，然后輸入數字Run”，并有兩個不斷閃爍的高壓符號，表示端口已有電0”鍵，按“確定”鍵，即可將上次設置的工作程序取END”，并連續蜂鳴提醒。此時按任一鍵可止鳴。U：5 3

注意安全。3000V；I：320。如果輸入錯誤，可之后逐漸將輸出電壓加 MO”號存儲單元。以后需4～400mA P：4～400W.。～ ； 法，是獲得可靠分析結果的保證。分析天平的種類很多，有普通分析天平、半自動/全自動電光分析天平及電子分析天平等。目前實驗室常規備用的是自動化程度較高的電子分析天平。下面介紹電子分析天平PL203/01型和AL104/01型(METTLER-TOLEDO)的性能及使用方法。PL203/01型精密電子天平：最大稱量210g；實際分度值0.001g；AL104/01型高分辨率電子分析天平：最大稱量110g；實際分度值0.0001g

1.使用方法

（1）檢查并調整天平至水平位置。檢查電源電壓是否匹配（使用配置的穩壓器），按天平儀器要求通電預熱至所需時間

（2）打開天平開關“短時點亮，天平回零時，可進行正式稱量。

（3）稱量時將潔凈稱量瓶或稱量紙置于稱盤上，關上側門，天平將顯示該重量，點擊“?O/T?”鍵自動校對零，然后逐漸加入待稱物質，直至所需重量為止。

（4）稱量結束應及時除去稱量瓶（紙）

2.注意事項

（1）天平應放置在牢固平穩水泥臺或木臺上，室內要求清潔、干燥，同時應避免光線直接照射到天平上。

（2）稱量時應從側門取放物質，讀數時應關閉箱門以免空氣流動引起天平擺動。

（3）揮發性、腐蝕性、強酸強堿類物質應盛于帶蓋稱量瓶內稱量，防止腐蝕天平。

（4）電子分析天平若長時間不使用，則應定時通電預熱，每周一次，每次預熱確保儀器始終處于良好使用狀態。

四、分光光度計

不同物質對不同波長入射的吸收程度各不相同，從而形成各具特征的吸收光譜原理，應用比色法可以對某些有色物質進行定性或定量分析。而且精度低，已遠遠不能滿足高精度微量分析的要求。不斷地更新換代，人們引進了分光光度法的概念，單色器、吸收池、接受器、顯示屏幕所組成，它不僅適應于可見光區，同時還擴展至紫外光區及紅外光區。光密度（而測定某一溶液對該單色光的吸收值。液定量和純度的初步判斷。下面介紹紫外可見光分光光度計的使用方法。該儀器除了能檢測核酸樣品濃度外，的測定，能檢測低至幾微升樣品（30min。on”，天平則自動進行靈敏度及零點調節。待顯示屏上所有字段，關上側門，切斷電源，并做好使用情況登記。

隨著科學技術不斷發展，分光光度計隨之應用。OD）是許多溶液中的溶質定量的指標之一，通過所產生的單色光分子生物學實驗中常使用紫外分光光度計進行核酸溶還可進行蛋白質濃度以及細胞培養液濃度70μl和5～7μl），樣品無需稀釋，測量后還可全部回收。4

分光光度計由光源、GeneQantTM Pro

2h，以。根據這一分析儀器也Amersham）

但由于比色法僅限于可見光區，（使用方法

(1）打開電源開關（ON），等待數秒鐘，顯示屏上顯示一系列數據，如本機型號、當前日期等，這些數據可以重新設置，當出現“instrument Ready”即可進入下一程序。

(2）在儀器面板上有許多功能鍵，其中包括檢測base sep、Tm、DNA、RNA、oligo、Protein595assay、Protein280 meas、cell culture等。例如，欲檢測DNA，按DNA鍵，即進入DNA檢測程序。在顯示屏上：

以上為儀器預設置的參考數據，若按“新設定。

(3）取石英樣品杯后放入儀器上的樣品槽中，放入時注意樣品杯的光學面朝前方。

(4)按“set ref”鍵，進行空白測試。顯示屏上出現一系列數據均““Insert sample 中進行測定。

(5）一個樣品測定完畢，按“

(6）取出樣品杯，吸出樣品，然后用高純水洗幾次，自然晾干。由于樣品杯十分昂貴，使用時要小心操作。以至鉻酸洗液（濃酸中浸泡不要超過

五、數字式酸度計

酸度計是實驗室配置溶液必備的儀器。本實驗室的酸度計為臺式微電腦酸堿度計和溫度計（Hanna

1.使用方法

（1）將pH

70μl或5。將樣品杯取出，吸干水分，稍干燥后，同樣吸入待測樣品，放入樣品槽 ,測量pH范圍為

Pathlengh

10mm

Units

μg/μl

Use 320nm

NO

Dilution Faotor 1

Insert reference，enter”鍵，和“select”鍵可以將以上的參數進行重7μl，容量大小根據需要。先用吸管吸高純水入樣品杯中，然 0.000”并提示插入樣品stop”鍵，返回“Instrument Ready”。可用溫水或稀鹽酸，乙醇15分鐘），表面只能用柔軟的絨布或拭鏡頭紙擦凈。0.00～14.00pH；溫度為0.0～100.0℃；

～”不能用手指拿樣品杯的光學面，用后要及時洗滌，）電極和溫度探頭與主機連接，主機與電源連接。

（2）取出電極保護套，如果有結晶鹽出現，這是電極常見現象，浸入水后就會消逝。如果薄膜玻璃或透析膜發干，可在HI170300電極保存液中浸泡1小時。

（3）pH校準。將pH電極和溫度探棒浸泡在所選的標準緩沖液內4cm（建議用pH6.86、7.01），緩沖液值可通過“D℃”或“?℃”鍵來調節。按“CAL”鍵，儀器將顯示“CAL”和“BUF”符號及“7.01”數據。當讀數不穩定時，屏幕會顯示“NOTREADY”；當讀數穩定時，屏幕會顯示“READY”和“CFM”，按“CFM”鍵確認校準值。確認第一校準點后，將pH電極與溫度探棒浸泡在標準緩沖液內4cm（建議用pH4.01、9.18、10.01）；再按“CAL”鍵，儀器將顯示“CAL”和“BUF”符號及“4.01”數據。按“CFM”鍵確認校正值。

（4）pH測量。校準完畢后，儀器自動進入溶液約4cm，停幾分鐘讓電極讀數穩定。

2.注意事項

（1）由于pH211酸度計內裝有可充電電池，在剛購買或長時間放置后，再使用時，通電校正測量完畢后，可將電源繼續還插入電源插座，只需關閉開關，這樣可以保證電池充電，是校正值得以儲存，下次測量時無須校正即可進入精確測量。

（2）不可用蒸餾水、去離子水和純水浸泡電極。如果讀數偏差太大（±沒有校正或電極變干。為避免電極受損，在關機前要將狀態時，在電極浸入電極保存液前，電極要與機器分開。

（3）如儀器已測過幾種不同的樣品溶液，請用自來水清洗，樣品清洗電極。

（4）溫度會影響pH的讀數，為測量準確的補償，用HI7669/2W溫度探棒浸入樣品中，緊靠電極并停幾分鐘，如果被測溶液的溫度已知或測量是在相同溫度下進行，只需動手補償，示溫度讀數伴有℃信號閃爍。溫度可通過“

六、PCR儀

PCR儀，也稱DNA熱循環儀、基因擴增儀，它是使一對寡核苷酸引物結合到正負上的靶序列兩側，從而酶促合成拷貝數為百萬倍的靶序列三種不同溫度進行DNA變性、引物復性、PCR儀主要應用于基礎研究和應用研究等許多領域，如基因分析、序列分析、進化分析、臨床診斷、法醫學等等。隨著分子生物學的不斷發展，因此了解PCR儀的性能，熟練掌握儀器的正確使用方法及使用過程中的注意事項，將是十分必要的。

現介紹PCR 擴增儀（Tl Thermocycler）的使用方法和注意事項。

pH測量狀態，將電極與溫度探棒浸泡在待測

pH電極從溶液中拿出。當處于關機 或在插入樣品溶液前，用待測pH值，溫度要在適合的范圍內進行自動溫度那么此時溫度探棒是不用連接，?℃”或“D℃”來調節。DNA片段，它的每一循環包括在DNA聚合酶催化的延伸反應的三個過程。PCR擴增技術也得到普及推廣應用，6

1pH），則是由于屏幕上會顯DNA鏈 1.使用方法

(1）接通電源開關，儀器進入準備狀態；在顯示屏上記錄了當前儀器的溫度和蓋子（Lid）的溫度。若儀器正在運行時，須按“

B ”鍵（start/stop），才能退出運行并返回準備狀態。

(2）編寫程序段。在準備狀態下按“

C ”鍵(programs)進入編程狀態，選定一程序號，然后按“enter”鍵，進入下一程序；按 “A”(list)鍵后，選一文件號（empty program）；再按“enter”鍵，進入下一程序；按“ABC”鍵，進入下一程序，用上下左右鍵號選擇一個字母（A、B、C、D、?），然后按“enter”鍵，進入下一程序；按“name ok”鍵，完成文件命名。

(3）設定蓋子的溫度。性溫度是95℃，那么蓋子的溫度就要設定為程序。

(4）設定變性溫度、變性時間、延伸溫度、延伸時間、退火溫度、退火時間及循環總數等參數。從第一步依次按“間，全部參數設置完后，按“

(5）運行程序。檢查設定是否正確，屏上可觀察到系統運行的情況，按“

七、凝膠成像系統

本系統屬全自動電腦控制影像分析系統，主要拍攝核酸的acrylamide電泳膠片。在與確定量，是分子生物學及生化蛋白試驗的重要檢測工具。像頭，變焦鏡，電腦以及專業凝膠圖象采集及分析斑點測量、PCR密度的定量分析等。此外，還提供圖像采集、標注、打印、數據和圖像發送到Word、Excel、圖像處理等功能。

1.使用方法

(1)打開電腦，啟動凝膠分析軟件，進入用戶界面。

（2）打開采集凝膠圖像的暗箱裝置電源開關，放入凝膠，打開紫外光源或白光光源，將采集裝置與電腦上采集卡相連，然后選擇“文件”菜單中的“圖像采集”或工具欄的“圖像采集”按鈕，出現圖像窗口：晰，可以調節暗箱上的變焦鏡，使之清晰。可直接將圖像保存起來，也可通過“圖像處理”對圖像進行旋轉、裁剪、濾波、調節對比度??方面的處理。

(3)對讀入的電泳凝膠圖像，可以啟動電泳凝膠分析系統。在“功能選擇”菜單中選擇“電泳凝膠”或在工具欄上的“電泳凝膠”工具，將出現泳道分析工具欄，并在“圖像顯示”子窗口中出現一個紅色的矩形框。還可進入“條帶分析”系統，對條帶 lid temp：

℃”enter”鍵進入，用四個移位鍵移動設定位置。先設定溫度，后設定時pgm ok”鍵，所設定的程序自動被保存。

按“Stop”可停止運行。markers比較后，可精確計算樣本的分子量，對核酸電泳也可準 “開始采集”105℃。待蓋子預熱后按“start”鍵，選擇設定好的程序，開始運行。顯示 agarose本系統包括暗箱，.軟件（3.3版）。該軟件提供對電泳凝膠、、“停止采集”、“采集圖像”等。如果圖像不清 7

10℃，例如變enter”鍵，進入下一 紫外透射儀，攝 進行編號，對“，蓋子的溫度一般比變性溫度要高 電泳膠片，及蛋白質的二條以上的條帶進行比較。

（4）采集圖像結束后，關閉暗箱電源開關，從暗箱中取出凝膠，并將玻璃板清洗干凈，晾干。

八、空氣恒溫搖床

搖床（振蕩器）為實驗室的常規設備。SHK-99-Ⅱ型臺式空氣恒溫搖床，采用微電腦控制系統，溫度范圍：室溫＋5℃～60℃，精度±0.5℃；時間范圍：1分鐘～99小時59分鐘；轉速范圍：60RPM～250RPM。

1.使用方法

(1）LED屏幕上各段數據：

000

00.0

屏幕上“1”表示第一段，如果是第二段則為“轉速，“Time”表示時間，不設定時可自動累計時間一直運行。的值隨時可以修改，隨時按新值運行。

(2）工作程序設置。按“F1”鍵，進入設置狀態。可在速度，溫度，時間，運行等四部分之間切換。在每一部分按“F2”鍵輸入數據，輸入完十位數據，再輸入個位數據，按“鍵，再按“F2”鍵，到小數位，再按“

(3）再按“F1”鍵，轉回運行狀態，按“

(4）按“End”鍵，結束系統運行。

2.注意事項

（1）打開電源，系統開始自檢，等待完畢，可以進行第2步參數設置。若屏幕出現：錯誤；b.“MOTOR ERROR”，表示電機部分有錯誤。

（2）運行過程可以打開箱蓋，這樣電機不運行，時間也停止，蓋上蓋接著運行。

（3）工作完畢，關閉電源。關機后，要等一段時間再開機。

九、水的凈化裝置

分子生物學實驗對水的純度要求越來越高，RPM

Temp

Time

00:00 2”，“Temp”表示溫度，“RPM”表示每分鐘“Temp”、“RPM”、F2”鍵，又到十位，以此循環。Start”鍵，電機開始運行，時間開始計時。LCD屏幕出現“WELCOME”字樣，系統自檢a.“TEMP ERROR”，表示溫度檢測線路有

一般蒸餾水常常難以滿足實驗要求，大多要求要

Time”F2”

“ 進行第二次蒸餾（雙蒸水），它可以去除水中的大部分有機雜質，但制作時間較長，而且無機雜質還是很多。許多實驗還需要去離子水，這就需要陰陽離子交換樹脂進行處理。目前，分子生物學實驗室都使用高質量的超純水。如美國微孔濾膜公司的Milli-Q超純水制造系統所制造的超純水適用于許多學科領域，如分子克隆、各種色譜分析、氨基酸分析、DNA測序、酶反應、組織和細胞培養等實驗。下面介紹RO-MB壁掛式反滲透高純水機性能及使用方法。RO-MB反滲透高純水機（杭州永潔達）產水量（25℃）10L/H；產水水質：RO純水：<10μs/cm，高純水：>15MΩ.cm；可用自來水制成普通實驗用水和高純水，同時滿足不同水質要求。在線電導率儀對產水水質連續檢測，可保證產水質量。

1.使用方法

(1)準備：先檢測與純水機相連的原水管路、廢水管路連接是否正常，打開原水閥門。供電電源是否正常，檢查按鈕是否在關閉狀態（按鈕彈出狀態）220V電源插座上。

(2）開機：依次按下電源開關，泵開關，純水機啟動產水，同時廢水排出，指示燈亮起，并處于自動運行狀態。

(3）取純水：若打開閥門打開時，檢測儀表顯示高純水電導率或電阻值。一杯水后再取新鮮水。

(4）關機：不用時可關閉個按鈕停機，自來水進水閥門不必關閉，這時機子內部的進水電磁閥已自動切斷水路。只要管路閥門不漏，也可使機子保持自動待機狀態。

2.注意事項

（1）純水機的正常使用環境溫度為度不低于5℃。

（2）預處理濾芯一般三至六個月更換一次，實際使用壽命與自來水水質、總過濾量等有關。

（3）混床濾芯產高純水約水中含鹽量、總用水量等有關。天開機30分鐘沖洗一次，冬季每隔

（4）使用過程若發現停機后泵仍頻繁地每隔數分鐘有規則地啟動數秒鐘又停機，此為管路漏水引起，需及時打開機箱加以解決。象，有利于沖洗和保護反滲透膜元件，十、消毒設備

細菌和細胞培養以及核酸等有關實驗所用的試劑、RO純水或高純水出口閥門，則可獲得相應水質的純水。當高純水出口 115～3噸，約二至四個月更換一次，2～3避免遭到微生物繁殖和減少污物沉積。將電源插頭插入帶有接地線的為了獲得高質量的高純水，可以先放掉 35℃，產水量會隨溫度降低而下降，冬季保養溫實際使用壽命與自來水水質、2天。必須注意定期沖洗維護。夏季宜每 乃屬正常現尤其高溫季節。器皿及實驗用具，應嚴格滅菌，有的實驗

～設備停運時間超過天開機沖洗一次。若每隔半小時以上啟動數秒鐘又停機，還要求沒有核酸酶的污染，故應將實驗器械，試劑等進行高壓消毒。對于經過導入DNA重組分子的菌株，操作后必須進行嚴格的高壓消毒滅活處理。

大批實驗物品、試劑、培養基等可以使用大型消毒器進行消毒。一些不能經受高壓、高溫消毒的試劑可用濾器濾膜除菌，器皿可用紫外線照射、75%乙醇或0.1%的十二烷基硫酸鈉（SDS）浸泡消毒。所有的細胞培養、細菌培養的操作，都應在紫外線消毒后的超凈工作臺中進行。

下面介紹立式自動壓力蒸汽滅菌器（LDZX-40BI）的使用方法。

1.使用方法

（1）開蓋：轉動手輪，使鍋蓋離開密封圈。

（2）通電：連接自動進水裝置。接通電源，將控制面板上電源開關按至低（LOW）紅燈亮，蒸發鍋內屬斷水狀態；缺水（（3）加水：打開水源，水位達到低水位，控制面板上低水位紅燈和缺水黃燈相繼滅，加熱（1-綠燈）亮，繼續加水至高水位（（4）堆放物品：需包扎的滅菌物品，體積不超過包裝之間留有間隙，堆放在金屬框內，這樣有利于蒸汽的穿透，提高滅菌效果。

（5）密封高壓鍋：推橫梁入立柱內，旋轉手輪，使鍋蓋下壓，充分壓緊。

（6）設定溫度：通電后數顯窗燈亮，上層為紅色，顯示溫度，下層為綠色，設定溫度和時間。先按控制面板上確認鍵，綠色數顯閃爍，進入溫度設定狀態。按一次移位鍵指相應位置閃爍，根據所需數據位置進行（單項循環）移位。按△增加鍵或所需溫度設定。設定完畢，按二次確認鍵，進行溫度確認。

（7）設定時間：按一次確認鍵，將溫度設定切換成時間設定；再按一次移位鍵，所指相應位置閃爍，完畢，按二次確認鍵，定時器開始倒計時。

（8）滅菌：在加熱初，將下排汽閥打開至垂直位置；下排汽閥待蒸汽冒出時，壓力表顯示指示為的15%為宜。安全閥設定數，超出壓力部分，安全閥將自動泄壓，并開始計數滅菌所需時間。滅菌完成，電控裝置將自動關閉加熱系統，伴有蜂鳴提醒；并將保溫時間切換成控制面板上電源開關按至

（9）干燥：物品滅菌后需要迅速干燥，須打開放汽閥和下排汽閥，將滅菌器內的蒸汽迅速排出，使物品上殘留水蒸汽快速揮發。根據所需數據位置進行移位；進行時間設定確認。℃時，將下排汽閥推向水平關閉位置；留有微量蒸汽逸出，以控制總汽流量使用最高滅菌溫度為OFF HIGH）綠燈亮，自動停止加水。按增加鍵或減少鍵，時間采用倒計時，124℃～126℃，ON處，若水位LACK）黃燈亮，電源已正常輸入。

200mm×100mm×100mm為宜，各

所??減少鍵，進行 進行所需時間設定。設定當滅菌鍋內溫度達到設定溫度，0.145Mpa～0.165Mpa范圍內屬于END顯示；此時，將

100壓力在處；關閉電源，停止加熱待其冷卻。

（10）將蓋開啟，取出已滅菌物品。關閉水源，打開下排水閥，排盡滅菌室的水與水垢，以備下次使用。

2.注意事項

（1）堆放滅菌物品時，嚴禁堵塞安全閥的出汽孔，必須留出空位保證其空氣暢通，否則安全閥因出汽孔堵塞不能工作，造成事故。

（2）滅菌液體時，應將液體灌裝在硬制的耐熱玻璃瓶中，以不超過選用棉花紗塞，切勿使用未打孔的橡膠或軟木塞，放蒸汽，必須待壓力表指針回零位方可排放余汽。

（3）對不同類型，不同滅菌物要求的物品，切勿放在一起滅菌，以免顧此失彼，造成損失。

實驗二

質粒DNA

一、實驗原理

細菌質粒是一類雙鏈、閉環的在于細胞質中、獨立于細胞染色體之外的自主復制的遺傳成份，于染色體外的游離狀態，制而復制，并通過細胞分裂傳遞到后代。

DNA，大小范圍從

在滅菌液體結束時不準立即釋 至200kb3/4體積為好，瓶口隨著染色體的復特別注意，的提取－堿裂解法1kb以上不等。各種質粒都是存通常情況下可持續穩定地處但在一定條件下也會可逆地整合到寄主染色體上，一般分離質粒DNA的方法都包括3個步驟：①培養細菌，使質粒DNA大量擴增；②收集和裂解細菌；③分離和純化質粒DNA。分離制備質粒DNA的方法很多，其中常用的方法有堿裂解法、煮沸法、SDS法、羥基磷灰石層析法等。在實際操作中可以根據宿主菌株類型、質粒分子大小、堿基組成和結構等特點以及質粒DNA的用途進行選擇。本實驗介紹堿裂解法提取質粒DNA。

堿裂解法提取質粒DNA是根據共價閉合環狀質粒DNA和線性染色體DNA在拓撲學上的差異來分離質粒DNA。在pH值介于12.0-12.5這個狹窄的范圍內，線性的DNA雙螺旋結構解開而被變性，盡管在這樣的條件下，共價閉環質粒DNA的氫鍵會被斷裂，但兩條互補鏈彼此相互盤繞，仍會緊密地結合在一起。當加入pH4.8乙酸鉀高鹽緩沖液恢復pH至中性時，因為共價閉合環狀的質粒DNA的兩條互補鏈仍保持在一起，因此復性迅速而準確，而線性的染色體DNA的兩條互補鏈彼此已完全分開，復性就不會那么迅速而準確，它們相互纏繞形成不溶性網狀結構，而復性的質粒DNA恢復原來構型，保持可溶性狀態。通過離心，染色體DNA與不穩定的大分子RNA，蛋白質-SDS復合物等一起沉淀下來而被除去，最后用酚氯仿抽提純化上清液中的質粒DNA。

二、儀器及試劑

1.儀器及耗材：37℃恒溫搖床、冷凍離心機、臺式離心機、微量移液器、50 ml離心管、1.5 ml離心管管、槍頭、各種規格的量筒、接種環、試劑瓶、100 l或者250 ml三角瓶、玻棒等。

2.試劑及配制：

LB培養液的配制：

酵母浸提物

5.0 g；

胰蛋白胨

10.0 g；

NaCl

10.0 g；

依次稱量后加入800 ml去離子水后攪拌至完全溶解，用5 mol/L NaOH（約0.2 ml）調節培養液的pH值至7.0。再加去離子水將溶液定容至總體積為1000 ml，10磅高壓滅菌20 min，冷卻后4℃保存。

溶液 Ⅰ（GET緩沖液）： 25 mmol/LTris-HCl（pH8.0）, 10 mmol/L EDTA, 50 mmol/L 葡萄糖

配制：1000 ml

mol/L Tris-HCl（pH8.0）

ml

0.5 mol/L EDTA（pH8.0）ml

20% Glucose（1.11mol/L）

ml

dH2O

910ml

將以上溶液混合裝瓶，10磅高壓滅菌20 min，冷卻后4℃保存。

溶液II（變性液）：200 mmol/L NaOH，1% SDS

配制： 500 ml

10% SDS

ml

2N NaOH

ml

取以上溶液，用滅菌去離子水定容至500 ml，充分混勻。室溫保存，此溶液保存時間最好不超過一個月，最好現用現配。

注意：SDS易產生氣泡，不要劇烈攪拌。

溶液 III(醋酸鉀液)：3 mol/L 醋酸鉀（KAc）緩沖液，pH 5.6。5 mol/L 冰醋酸

配制：500 ml

醋酸鉀

g

冰醋酸

57.5 ml

加入300 ml去離子水后攪拌溶解。待醋酸鉀溶解后，再加去離子水將溶液定容至高溫高壓滅菌后，4℃保存。

10×TE緩沖液（pH 8.0）：100 mmol/L Tris-HCl, 10 mmol/L EDTA

配制：1000ml mol/LTris-HCl 緩沖液(pH 8.0)

100ml

500 mmol/L EDTA(pH8.0)ml

加入約800 ml的去離子水，均勻混合。溶液定容至1 L。高溫高壓滅菌后，苯酚/氯仿/異戊醇(25 : 24 : 1)：將量取25 ml Tris-HCl（pH8.0）平衡苯酚，加入 13

500 ml。4℃保存。24 ml 氯仿和 1 ml 異戊醇，充分混合后，移入棕色玻璃瓶中，4℃保存。

其它試劑：TE（pH8.0）、異丙醇、氯仿/異戊醇（24:1）、無水乙醇、70％乙醇、氨卞青霉素貯存液（50 mg/ml）

三、操作步驟

1.菌體的培養和收獲

(1）將5～10 ml含有氨卞青霉素（后接入一單菌落，并保持通氣良好，于接一次，于37℃ 220 rpm振搖培養(2）吸取培養的菌液1.5 ml，轉入棄上清，將離心管倒置，使液體盡可能流盡。

2.質粒DNA提取（堿裂解法）

（1）加100 ul 溶液Ⅰ 重懸細菌沉淀，用槍吹打直至混和均勻。

（2）加200 ul溶液 Ⅱ，蓋緊管口，液變透明，粘稠）。

（3）加150 ul溶液 Ⅲ，輕微振蕩混和

（4）12000 rpm離心6 min，取上清液至另一離心管（棄沉淀）

（5）加等量的酚/氯仿/異戊醇，旋渦混勻離心管。

（6）加1倍異丙醇，振蕩混勻，靜置倒置于吸水紙，將附于管壁的殘余液滴除凈。

（7）加200 ul 70％乙醇洗滌沉淀物，臺式離心機在室溫下晾干（或在50℃－60℃的烘箱中也可）

（8）沉淀加20μl TE, 反復吹打使質粒

四、常見問題及可能原因

1.提取的質粒DNA不純：變性不充分；關鍵步驟反應時間過短；離心時間或速度不夠。

2.提取的質粒DNA呈涂布狀：操作過程中用力過猛，動作過大；操作系統內有污染。

AP）的LB培養基加入到容量為100ml的三角瓶中，然37℃ 220 rpm振搖過夜培養（約16h）后可以再轉3～4 h。的離心管中，用臺式離心機以12000 rpm

輕緩上下顛倒離心管以混合內容物。室溫靜置10 sec，置冰上10 min(溶液出現白色沉淀。1 min，12000 r/min離心6min，取上清液至另一10 min，12000 rpm離心6 min。棄上清液，將離心管 12000 rpm離心2 min，棄上清液，將沉淀。DNA充分溶解，－20℃保存。14 min。5 min（溶)。

1.5 ml離心 3.與染色體DNA分離不全：變性過程不完全；試劑配制有問題（成分，濃度或pH）。

實驗三

瓊脂糖凝膠電泳

一、實驗原理

瓊脂糖凝膠電泳是分離和純化的多孔支持介質（瓊脂糖凝膠）的樣品孔中，并置于靜電場上。由于架兩側帶有含負電荷的磷酸根殘基，分子的遷移速度取決于分子篩效應。因而可依據DNA可以分離相對分子質量相同，而構型不同的相對分子質量標準參照物和樣品一起進行電泳而得到檢測。以提供一個用于確定EB)，其分子可插入下，呈桔紅色熒光，因此也可對分離的

一般瓊脂糖凝膠電泳適用于大小在膠的制備以及瓊脂糖凝膠電泳在

二、儀器及試劑

1.儀器及耗材：

水平電泳槽、電泳儀、100 ml或250 ml錐形瓶、量筒、吸頭等。

2.試劑及配制：

50×TAE緩沖液的配制：

配制1000 ml

DNA 片段的常用技術。把DNA樣品加入到一塊包含電解質DNA分子的雙螺旋骨因此在電場中向正極移動。在一定的電場強度下，DNA具有不同的相對分子質量的DNA片段泳動速度不一樣，DNA，也DNA分子。在電泳過程中可以通過示蹤染料或相對分子質量標準參照物相對可DNA片段大小的標準。在凝膠中加入少量溴化乙錠(ethidium bromide, DNA的堿基之間，形成一種絡合物，在254～365nm波長紫外光照射DNA進行檢測。0.2kb～50kb范圍內的DNA片段。本實驗介紹瓊脂糖凝

DNA片段分離中的應用方法。

凝膠成像分析系統、微波爐、微量移液器、透明膠帶、點樣板或parafilm、2 mol/L Tris-乙酸，0.05 mol/L EDTA（pH 8.0）15 分子的大小來使其分離。凝膠電泳不僅可分離不同分子質量的Tris

242 g

冰乙酸

57.1 ml

0.5 mol/L EDTA

ml

加入600 ml去離子水后攪拌溶解，將溶液定容至1 L后。高溫高壓滅菌，室溫保存。

1×TAE緩沖液的配制：

稱量20 ml的50×TAE緩沖液，再加入980 ml的去離子水。

溴化乙啶貯存液：10 mg/ml 溴化乙啶

配制：100 ml

稱取1 g溴化乙啶，置于100 ml燒杯中，加入80 ml去離子水后攪拌溶解。將溶液定容至100 ml后，轉移到棕色瓶中。室溫保存。

6×上樣緩沖液：0.25%溴酚藍，0.25%二甲苯青FF，30%甘油。

配制：10 ml

溴酚藍mg

二甲苯青FF

mg

甘油

ml

用6×TAE緩沖液定溶至10 ml，分裝成1 ml/管。-20℃保存。

其它試劑：DNA樣品、DNA Ladder、瓊脂糖、三、操作步驟

1.制備1％瓊脂糖凝膠(大膠用70ml，小膠用50ml)：稱取0.7 g中，加入70 ml（50ml）1×TAE，瓶口倒扣小燒杯。微波爐加熱煮沸搖勻，即成1.0%瓊脂糖凝膠液。

2.膠板制備：取電泳槽內的有機玻璃內槽（制膠槽）洗干凈、晾干，放入制膠玻璃板。取透明膠帶將玻璃板與內槽兩端邊緣封好，形成模子。將內槽置于水平位置，好梳子。將冷卻到65℃左右的瓊脂糖凝膠液混勻小心地倒入內槽玻璃板上，使膠液緩慢展開，直到整個玻璃板表面形成均勻膠層。室溫下靜置直至凝膠完全凝固，垂直輕拔梳子，取 16

0.5 g）瓊脂糖置于錐形瓶3次至瓊脂糖全部融化，并在固定位置放（下膠帶，將凝膠及內槽放入電泳槽中。添加1×TAE電泳緩沖液至沒過膠板為止。

3.加樣：在點樣板或parafilm上混合DNA樣品和上樣緩沖液，上樣緩沖液的最終稀釋倍數應不小于1X。用10 ul微量移液器分別將樣品加入膠板的樣品小槽內，每加完一個樣品，應更換一個加樣頭，以防污染，加樣時勿碰壞樣品孔周圍的凝膠面。（注意：加樣前要先記下加樣的順序）。

4.電泳：加樣后的凝膠板立即通電進行電泳，電壓60－100V，樣品由負極（黑色）向正極（紅色）方向移動。電壓升高，瓊脂糖凝膠的有效分離范圍降低。當溴酚藍移動到距離膠板下沿約1cm處時，停止電泳。

(5）電泳完畢后，取出凝膠，用含有0.5 ug/ml的溴化乙錠1×TAE用清水漂洗10 min。

(6)觀察照相：在紫外燈下觀察，DNA存在則顯示出紅色熒光條帶，采用凝膠成像系統拍照保存。

四、常見問題及注意事項

1．配瓊脂糖時應使其完全熔化后方可制膠。

2．瓊脂糖凝膠易于破碎，操作時要輕緩。

3．電泳時應注意電源線路，預防觸電。

4．溴化乙淀具有致癌作用，配制及使用時應帶乳膠或一次性塑料手套。并在專門的實驗室內使用。

5．紫外線對人體有損傷作用，開燈時間不宜太長，注意防護。

6．DNA帶形狀模糊：DNA加樣過多；電壓太高；凝膠中有氣泡。

7．質粒DNA的存在形式有3種，①共價閉環DNA（cccDNA），常以超螺旋形式存在；②開環DNA（ocDNA），此種質粒DNA的兩條鏈中有一條發生一處或多處斷裂，因此可以自由旋轉從而消除張力，形成松弛的環狀分子；③線狀DNA，因質粒處斷裂而造成。因此質粒DNA電泳的結果中有可能出現三條泳帶，它們的泳動速度為：cccDNA > 線狀DNA > ocDNA。min，再DNA的兩條鏈在同一溶液染色約 DNA18

DNA

實驗四

限制性內切核酸酶的酶切與鑒定

一、實驗原理

限制性內切酶是一類能識別雙鏈分子中特異核苷酸序列的水解酶，主要存在于原核生物中。根據限制酶的識別切割特性、催化條件及是否具有修飾酶活性可分為 Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ型三大類。其中Ⅱ類酶在分子克隆和基因操作中最為有用，是常用的分子生物學工具酶。

限制性內切酶識別序列長度一般為4～8個呈回文序列的特異核苷酸對。一般情況下，識別序列越長，在同一DNA分子中識別位點出現的頻率就越小。許多限制性內切酶的酶切位點已被確定。例如EcoRl 酶的識別與切割序列為以下6個堿基對。

5′??GAATTC??3′

EcoR I以獨特的方式識別并裂解這個順序，形成兩個 和

……G

這些末端為互補的，即粘性末端，并可在連接酶的催化下與由相連接。

限制性內切酶主要用于基因組基因片段的分離與回收以及單酶切、雙酶切或部分酶切等不同方式。大量的酶切反應。小量酶切反應主要應用于質粒的酶切鑒定，DNA，大量酶切反應用于制備目的基因片段，體積為

本實驗為EcoR I對質粒性內切核酸酶酶切位點。瓊脂糖凝膠電泳進行鑒定酶切效果。

二、儀器與試劑

1.儀器：

水浴鍋、離心管、移液器、吸頭、2.試劑：

質粒pUC18、EcoR I限制性內切核酸酶、內切酶反應緩沖液、瓊脂糖、電泳緩沖液、樣緩沖液、溴化乙啶染液、無菌水等。

三、操作步驟

3′??

……CTT AA DNA的片段化、重組DNA分子物理圖譜的構建等。根據酶切目的和要求不同，可有pUC18的小量酶切。在用特定的限制性內切核酸酶對質粒進行酶切反應后，CTT AAG?? 5′

5′突出末端：

AATTC……

EcoR I產生的其它分子末端DNA分子的構建與鑒定、載體中目的可分為小量酶切反應和體積為20 μ50～100 μl，DNA

在質粒的雙鏈環狀DNA電泳設備等。

l, 含0.210通常可采用1 μg 30ug。6×上

G……根據酶切反應的體積不同，～用量在～分子上有多個限制

1．限制性內切酶反應一般在滅菌的0.2或0.5ml PCR薄壁離心管中進行。

2.酶切反應體系（10ul）：

酶解緩沖液（10×buffer）ul

限制性內切酶

0.5 ul EcoR I(7.5U)

底物DNA（質粒）

滅菌ddH2O

限制性內切酶最后加入，手彈混勻或用吸頭輕輕上下吹吸，混勻后離心15s。37℃水浴消化

3.酶切完畢，分子量標準物同時進行電泳以確定應，或加入適量酶后繼續反應。

5.經電泳觀察酶切反應完全后，將上述反應液置將剩余酶切產物保存于

四、注意事項

1.限制性內切酶需保存于

2.限制性內切酶溶液通常含有溶液底部，所以要充分搖勻。

3.加樣時吸頭垂直進入試劑管，避免碰到管壁，每加完一樣要換一個吸頭，同時在已加的樣品前做個記號以防止錯加或漏加，避免污染。

4.酶（置于冰盒上）應最后加入，盡量減少室溫接觸機會。加酶時吸頭深入不可過深。

5.酶解消化反應溫度及時間根據該酶使用說明書而定。

6.注意酶的用量，加入的酶量按的10%，以避免酶液中甘油干擾反應活性的可能，即在識別序列以外的位點進行切割。此外，反應體系中甘油的質量分數大于12%，以及缺少

五、相關問題

2h。取5ul酶切產物進行瓊脂糖凝膠電泳，?C20℃備用。-20℃，操作時應將酶保持在冰浴中，避免長時間置于高溫中。NACL和存在M

x ul（依質粒濃度而定）

加至10 ul 鑒定酶切反應效果，DNA片段的大小。如果酶切不完全，可繼續65℃水浴中10～15min，中止酶切反應，50%甘油，加入反應管后，因密度較大，往往沉淀至

1-3U/ug DNA計算，酶的體積應低于反應總體積

。酶量過大（≥25U/ug DNA）時，有產生所謂星號 20

6000 r/min，DNA.酶解消化反

必須用 等情況下，都有可能出現星號活性。

1.酶的保存

不同的限制酶往往保存在大致相似的緩沖液中，這種特定配方的緩沖液能使酶活性維持較長時間。常用的保存緩沖液各組分作用如下：

Tris-HCl（7.4―7.8）：

維持穩定的pH范圍。

50-100mmol/L

NaCl或KCl：提供一定的離子強度。

0.1mmol/L EDTA：

1mmol/L

DTT：

200-500ug/ml BSA：

度，防止蛋白質分子濃度過低而導致酶分子變性。

50%的甘油：

1-5 g/L的Triton-100：

白質分子的表面變性作用。

2.酶單位的定義

限制酶的單位通常定義為：1U的酶能在約完成酶切1ug的λDNA。確定限制酶單位的具體操作方法是分別向列的酶（1U左右），當電泳觀察到酶切片段的條帶不再發生變化時說明已作用完全，割的最少酶量定為1U的酶量。

3.限制酶的作用條件

限制酶切割DNA的反應中，酶切條件是實驗成功的重要因素，其中包括反應的溫度、時間與反應的緩沖體系，除了這些條件外，只有在正確選擇酶反應條件時才能達到最佳酶切效果。

（1）作用溫度

早期的酶切反應都在37℃進行，這種方法雖然簡單、統一，但卻不能達到每個酶的最適反應溫度。為了達到最佳酶切的效果，最好根據所選用的酶確定所需要的反應溫度。

（2）緩沖體系

限制酶反應的緩沖體系大致相同，都含有以下組分：約作用是將酶反應體系的pH維持在7.5-8.5；約

絡合掉能激活限制酶的鎂離子。

保護酶分子上的還原性基團。

牛血清白蛋白提高溶液中蛋白質的濃

使酶液保存于-20℃不至凍結。

這是一種非離子型表面活性劑，能防止蛋50ul合適的反應緩沖體系中，在1ug的底物中加入一系DNA的純度與濃度也會影響酶切效果，100mmol/L10mmol/L的MgCl2，作用是為限制酶提供激

1h內完全切Tris-HCl，的活因子；1mmol/L的DTT，作用是保護還原性基團；約150mmol/L的NaCl，作用是提供合適的離子強度。由于認識的局限性，早期的限制酶反應體系僅根據其中NaCl含量的不同分為高鹽、中鹽與低鹽三種，這同樣不能使每種酶獲得最適反應條件。現在提供酶的很多廠商能提供4-10種緩沖體系，其中各必需成分之間只有很小的差別，目的是使每種酶都發揮最大的作用。

緩沖液一般配成10倍的濃度，使用時以1/10的比例加入，當然為了減小吸量誤差也可自行配制5倍的緩沖液。

(3)反應體積與時間

酶反應體積一般不宜小于20ul。因為過小的反應體積在加入各種成分時易產生誤差，甘油含量易超過10%。在37℃保溫可因水分蒸發而明顯改變反應體系中各成分的濃度，從而影響酶活力。同時還要考慮反應完畢進行電泳時，所加樣品中DNA的量能夠在電泳中顯出清晰的泳帶。

常規的酶切反應一般控制在60min內進行，但也可以根據切割對象與所用的酶將保溫時間延長至十幾個小時。

(4)DNA的純度與濃度

除了上述酶反應條件外，影響酶切效果的最主要因素是DNA的純度。例如，樣品中含有大量RNA雜質時會因減少了酶的有效濃度而影響酶切效果；某些雜蛋白未除凈而結合在DNA時也會影響酶切效果。至于抽提過程中未除凈的各種影響因素就更多了，可能是微量的氯仿、SDS、EDTA、酚、EB、乙醇或是瓊脂糖凝膠中的硫酸根離子等。

DNA純度的另一個指標是不可含有微量的DNA酶。如果酶切后電泳結果顯示出不清晰條帶或成為一片紅色（術語稱Smear）時，可肯定系統中已經污染了DNA酶。

DNA樣品中含有大量RNA時可用RNA酶處理；含有結合在DNA上的雜蛋白與DNA酶時都可用氯仿/異戊醇抽提；當樣品中含有氯仿、SDS、硫酸根等抑制酶切的小分子物質時可以通過沉淀更換一個新的緩沖體系。當然，酶切失敗時也不能排除除DNA外的一切因素，如無菌水，EP管，吸咀等的干凈程度以及內切酶自身的酶活性情況。

除純度外，DNA的濃度也會影響酶切效果，一般DNA質量濃度在1ug/20ul才能得到較好的酶切效果，質量濃度高達1.5ug/20ul時就可能發生酶切困難。

(5)終止酶切反應的方法

如果需對酶切片段進行連接或標記等操作時，首先要將限制酶滅活。滅活的方法可分為三種：第一種是向反應緩沖體系中加入終濃度為10-12.5mmol/L的EDTA，原理是絡合掉酶反應中所需的鎂離子。但這種方法會影響需鎂離子的后續反應。所以一般加入EDTA后，要用乙醇沉淀法來更換緩沖體系，以除去EDTA，但這樣就會造成DNA的損失。第二種方法是熱失活：一般的酶如EcoRⅠ等在65℃保溫60min即可；另一些酶如Hind Ⅲ等需在85℃保溫 22 30min方能達到目的；極端的例子是Ttb Ⅲ甚至不能用加熱的方法使之失活。熱失活方法的特點是簡單并且未向體系中引入任何物質，特別適用于連續進行幾個酶切反應；熱失活法的另一個特點是不用更換體系，所以不會造成DNA的損失。第三種方法是用酚和氯仿抽提使之失活，之后以乙醇沉淀DNA片段。這種方法的特點是處理條件劇烈，能使酶徹底失活（不像第一種方法中酶蛋白并未變性而只是沒有激活因子而已）。

實驗五

大腸桿菌感受態細胞的制備及轉化

一、實驗原理

體外連接的重組DNA分子導入合適的宿主細胞中才能大量的進行復制、增殖和表達。研究發現，用含Ca2+ 的溶液處理大腸桿菌細胞會易于吸收外源DNA。大腸桿菌吸收外源DNA的過程被稱為轉化。細菌處于容易吸收外源DNA的狀態稱為感受態。用理化方法可以誘導細胞進入感受態，如電轉化法、CaCL2法。

CaCL2法是目前實驗室常用的制備感受態細胞的方法，其原理是使細菌處于0°C、CaCl2低滲溶液中，細胞膨脹成球形，細胞膜的通透性發生改變，外源DNA附著于細胞膜表面，經42°C短時間熱沖擊處理，促進細胞吸收DNA復合物。宿主細胞一般是限制―修飾系統缺陷的變異株，即不含限制性內切酶和甲基化酶的突變株，而質粒載體攜帶有某一抗生素抗性基因，如抗氨卞青霉素的基因（AP＋）。若將轉化的細胞涂布與于含氨卞青霉素的平板上，則只有那些含有被轉化質粒的細胞才能生存并生長增殖。從而可以篩選出哪個克隆含有質粒。

本實驗以E.coli JM109菌株為受體細胞，受體菌使其處于感受態，然后與pUC18質粒共保溫實現轉化。將經過轉化后的全部受體細胞進行適當稀釋，在含有氨卞青霉素的平板培養基上培養，只有轉化體才能存活，化的受體細胞則因無抵抗氨卞青霉素的能力而死亡。轉化子經過擴增后，可將轉入的質粒DNA分離提取出來，用于電泳分析、限制性內切酶圖譜的制作以及

二、儀器及試劑

1.儀器：

恒溫搖床、電熱恒溫培養箱、電熱恒溫水浴鍋、超凈工作臺、分光光度計、高速冷凍離心機、臺式離心機。

2.材料

E.coli JM109受體菌、質粒pUC18。

3.試劑：

LB培養液（1L）：

胰蛋白胨

10g

酵母粉

5g

NaCl

10g（高鹽）或

氨芐青霉素（Ampicillin）

100mg/ml

用CaCl2處理而未有轉DNA測序等實驗。5g（低鹽）在三角瓶中將胰蛋白胨 10g，酵母粉 5g以及 NaCl 5g溶于1L的重蒸水中并高壓滅菌。待冷卻至55℃，向溶液中加入1.5ml 100mg/ml 的氨芐青霉素。然后貯存于4℃備用。

LB平板培養基：

胰蛋白胨

10g

酵母粉

5g

NaCl

10g

瓊脂

13g

在三角瓶中依次將上述配方加入1L的重蒸水中并高壓滅菌。待培養基降溫至養基并輕輕旋轉以使溶解的瓊脂均勻分布于整個培養基溶液中，根據需要加入氨芐青霉素，然后可直接從三角瓶中倒出培養基鋪制平板。90mm直徑的培養皿約需培養基完全凝結后，倒置平皿并貯存于4℃備用。

其它試劑：

0.1M CaCl2溶液、滅菌蒸餾水

三、操作步驟

1.感受態細菌的制備：

（1）用接種環從E.coli JM109菌平板上挑取一單克隆菌落，培養基的試管中中，37℃ 220 rpm振蕩培養過夜（12～16h）。

（2）取0.5 ml過夜菌液接種到裝有50ml LB液體培養基三角瓶中中，振蕩培養2－3h，隔20－30min測量OD600值，至OD600值為轉至1.5ml 離心管中，每管1ml菌液，按需要決定管數。

（3）4℃，12000 rpm，離心2 min，以回收細菌。

（4）倒凈上清液，倒置離心管于濾紙上1min，使殘留的痕量培養液流盡。冰預冷的0.1mol/L CaCl2懸浮細胞，冰浴30 min。

（5）4℃，12000 rpm，2 min。

（6）倒凈上清液，倒置離心管1min，使殘留液流盡。每管加CaCl2重新懸浮細胞（重懸時操作要輕），即成感受態細胞懸浮液。

2.細菌轉化：

（1）取3只滅菌的Ep管，分別編號1、2、3、分別加入以下各組分：加入

5g，30接種于裝有0.3-0.4。無菌條件下將細菌100 ul冰預冷的 50℃，取出培50ml培養基。5ml LB液體37℃，220 rpm每管加1ml0.1 mol/L 10～20ng

或 ～ 質粒DNA（體積小于10ul），同時做兩個對照組：

1號：受體菌對照組：

100ul感受態細胞懸浮液+2ul無菌ddH2O

2號：質粒DNA對照組：100ul 0.1mol/L CaCl2+2ul pUC19

3號：正常轉化組：100ul感受態細胞懸浮液+2ul pUC19

（2）輕輕旋轉離心管以混勻內容物，冰浴30min，促進DNA分子在感受態細胞表面的吸附。

（3）轉入便于DNA分子的吸附進入，提高轉化率。

（4）迅速轉入冰上冷卻

（5）使受體菌恢復正常生長狀態，并且表達

（6）取200ul37℃恒溫培養箱倒置培養可將之置于37℃恒溫培養箱繼續培養，100ul左右，用移液器吹打重懸，再全部涂于含

（7）觀察并記錄轉化子出現的數目，計算轉化率。

四、注意事項：

1.實驗中所用的器皿均要滅菌，以防止雜菌和外源

2.實驗過程中要注意無菌操作，溶液移取、分裝等均應在無菌超凈工作臺上進行。

3.必須設對照組，以檢驗實驗過程中是否有污染。

4.整個實驗過程均需置于冰上。

5.選用對數生長期細胞，42℃水浴2min，通過熱刺激增強CaCL2的作用，2min，修復細胞膜。600u無抗生素lLB液體培養基，搖勻后于37℃，Ampicillin抗性基因。Ampicillin的LB平板，將平板置于無菌臺直至液體被吸收，12－16h后觀察結果，其余保存于4℃。如果平板上沒有長出菌落，同時將剩下的500ul菌液離心，Ampicillin的LB平板上，置 DNA

OD600不應高于0.6。26

使細胞膜產生通道，220 rpm，振蕩倒掉大部分上清，37℃培養。60min。留 加菌液涂在含 的污染。

實驗六

動物組織細胞基因組

一、實驗原理

真核生物的一切有核細胞（包括培養細胞）都能用來制備基因組的DNA是以染色體的形式存在于細胞核內，質、脂類和糖類等分離，又要保持組織細胞在含仿/異戊醇抽提分離蛋白質，得到的

蛋白酶K在勻漿后提取EDTA則抑制細胞中分子完整地分離出來。

二、儀器及試劑

1.恒溫水浴鍋、臺式離心機、紫外分光光度計（離心管（滅菌）

SDS（十二烷基硫酸鈉）和蛋白酶DNA的反應體系中，Dnase

、吸頭（滅菌）DNA提取 因此，制備DNA分子的完整。提取KDNA溶液經乙醇沉淀使SDS和EDTA（乙二胺四乙酸二鈉）存在下保持很高的活性。SDS可破壞細胞膜、活性；而蛋白酶K可將 27

DNA的原則是既要將DNADNA核膜，并使組織蛋白與蛋白質降解成小肽或氨基酸，GeneQuant）DNA。真核生物DNA與蛋白 DNA分離，使DNA 的一般過程是將分散好的的溶液中消化分解蛋白質，再用酚和氯從溶液中析出。的重要特性是能在的 儀器：、移液器、玻璃勻漿器、2.試劑：

（1）細胞裂解緩沖液：

Tris(pH8.0)

mmol/L

EDTA(pH 8.0)

500 mmol/L

NaCL

mmol/L

SDS

10%

胰RNA酶

20ug/ml

（2）蛋白酶K：

稱取20mg蛋白酶k溶于1ml滅菌的雙蒸水中，?C20℃備用。

（3）TE緩沖液（pH 8.0）：高壓滅菌，室溫貯存。

（4）酚?氯仿?異戊醇（25:24:1）、（5）異丙醇、冷無水乙醇、70%乙醇、滅菌水。

三、操作步驟

1.取新鮮或冰凍動物組織塊0.1g（0.5cm3），盡量剪碎。置于玻璃勻漿器中，加入1ml的細胞裂解緩沖液勻漿至不見組織塊，轉入1.5ml 離心管中，加入蛋白酶K（500ug/ml）20μl，混勻。在65℃恒溫水浴鍋中水浴30min，也可轉入37℃水浴12～24h，間歇振蕩離心管數次。于臺式離心機以12000 rpm離心5min，取上清液入另一離心管中。

2.加2倍體積異丙醇，倒轉混勻后，可以看見絲狀物，用100ul 吸頭挑出，涼干，用200ul TE 重新溶解。（可進行PCR反應等，需要進一步純化的按下列步驟進行）

3.加等量的酚?氯仿?異戊醇振蕩混勻，離心12000 rpm，5min。

4.取上層溶液至另一管，加入等體積的氯仿?異戊醇，振蕩混勻，離心12000 rpm，5min。

5.取上層溶液至另一管，加入1/2體積的7.5mol/L乙酸氨加入2倍體積的無水乙醇，混勻后室溫沉淀2min，離心12000 rpm ,10min。

6.小心倒掉上清液，將離心管倒置于吸水紙上，將附于管壁的殘余液滴除掉。

7.用1ml 70%乙醇洗滌沉淀物1次，離心12000 rpm，5min。

8.小心倒掉上清液，將離心管倒置于吸水紙上，將附于管壁的殘余液滴除掉，室溫干燥。

9.加200ul TE重新溶解沉淀物，然后置于4℃或?C20℃保存備用。

10.吸取適量樣品于GeneQuant上檢測濃度和純度。

四、常見問題

1.選擇的實驗材料要新鮮，處理時間不易過長。

2.在加入細胞裂解緩沖液前，細胞必須均勻分散，以減少

3.提取的DNA不易溶解：不純，含雜質較多；加溶解液太少使濃度過大。沉淀物太干燥，也將使溶解變得很困難。

4.電泳檢測時DNA成涂布狀：操作不慎；污染核酸酶等。

5.分光光度分析DNA應加入SDS至終濃度為

6.酚/氯仿/異戊醇抽提后，其上清液太黏不易吸取：含高濃度的的量或減少所取組織的量。

A280/A2600.5%，并重復步驟 DNA團塊形成。1.8；不純，含有蛋白質等雜質。在這種情況下，2～8。DNA，可加大抽提前緩沖液29

的小于

實驗七

DNA的定量

一、實驗原理

核酸分子（DNA或RNA）由于含有嘌吟環和嘧啶環的共軛雙鍵，在260 nm的紫外吸收峰，其吸收強度與核酸的濃度成正比，這個物理特性為測定核酸溶液濃度提供了基礎。OD260相當于dsDNA 50 ug/ml，ssDNA 33 ug/ml和ssRNA 40 ug/ml。可以此來計算核酸樣品的濃度。

紫外分光光度法不但能確定核酸的濃度，還可通過測定260nm和280nm的紫外線吸收值的比值（A260/A280）估計核酸的純度，純的DNA制品的比值為1.8，RNA的比值為DNA高于1.8,則可能有RNA污染，低于1.8則有蛋白質污染。

對于很稀的核酸溶液，可用熒光光度法進行測定。DNA 本身并不產生熒光，但在熒光染料溴化乙錠（EB）插入DNA 的堿基對平面之間并與之結合后，DNA樣品能在紫外光的激發下產生桔紅色熒光。熒光強度與被結合的EB的量成正比，而被結合的EB的量又與核酸分子長度和含量成正比，使用一系列已知的不同濃度DNA溶液作標準對照，可比較出被測DNA溶液的濃度。靈敏度可達1～5ng。由于是基于目測，所以是估計水平。簡便，但準確性較低。

二、儀器及試劑

1.儀器：Amersham

GeneQantTM Pro 紫外可見分光光度儀，瓊脂糖凝膠電泳設備。

2.試劑及配制：

5×上樣緩沖液：

配制10 ml

2.0, 波長處有特異若 該方法經濟

0.5 mol/L EDTA(pH8.0)

ml

10% SDS

ul

50% 甘油

2.5 ml

0.2% 溴酚藍

mg

0.2% 二甲苯青FF

mg

加去離子水至10 ml

其它試劑：0.1×TE、DNA標準液，EB儲存液（10 mg/ml），三、實驗步驟

1.紫外分光光度法

（1）用0.1×TE對待測DNA樣品按1:20或合適的倍數稀釋。

（2）開機，儀器會自動對光路及分析軟件進行檢測，待顯示屏上出現“instrument Ready”時，進入核酸測定窗口

（3）調零。先用0.1×TE緩沖液注入樣品杯，放入樣品槽，關閉蓋板。點擊“set ref”鍵，儀器自動校正零點。將樣品槽內的樣品杯取出，換上待測樣品。

（4）吸70 ul已稀釋的DNA樣品轉入石英樣品杯，放入樣品槽，關閉蓋板。如果樣品很少，可以用5～7ul的石英樣品杯。點擊“enter” 鍵，儀器即進入分析狀態。窗口同時顯示260和280nm處的光密度（OD值）及260/280nm和280/260nm的比率以及DNA樣品的濃度等。

（5）打開蓋板，取出石英樣品杯，吸出樣液，用高純水清潔石英樣品杯，風干后，再加入下一個待測樣品。

（6）DNA純度：以OD260/ OD280比值來反映。當OD60 /OD80比值 <1.8時，說明樣品存在蛋白質或酚等雜質，可采用平衡酚/氯仿―異戊醇再抽提除去蛋白質或用乙醚抽提去除殘留酚，再用無水乙醇沉淀，TE懸浮后再測定。當OD60/OD280比值>2.0，說明樣品存在RNA污染，可以用RNA酶處理樣品去處RNA。

2.EB熒光分析法

（1）瓊脂糖凝膠的制備。

（2）樣品的準備。把待測DNA樣品進行1:2連續稀釋，并準備一份DNA標準液作對照。

（3）上樣。稀釋樣品與上樣緩沖液按1:5混合均勻后上樣。

（4）電泳。用100V穩壓電泳至溴酚藍指示劑遷移到凝膠的3/4處停止電泳。

（5）取出凝膠，入EB熒光染液中作用20min，取出后清水漂洗干凈，然后紫外檢測。肉眼可見到的最高稀釋度約含DNA 80ng。此法也可用于了解核酸樣品中的嚴重污染干擾核酸紫外線吸收物質的情況。

四、常見問題

1． 紫外分光光度法不能區分三種構型，也不能區分染色體染色體DNA、以及偏高。

2．OD320值是背景，若溶液鹽濃度越高，3．的光面以避免干擾測定。

DNADNA和DNA解鏈的增色效應等因素的影響，因此測得的數據往往比實際濃度 RNA等。由于測定吸收光度OD320也越高。要小心不要摔破，32

DNA分子的超螺旋、開環、線狀A260時，難以排除 持杯時也不要接觸透明RNA、分子的構型，如質粒測樣品時使用的石英樣品杯比較貴，實驗八

PCR基因擴增

一、實驗原理

聚合酶鏈式反應（Polymerase Chain Reaction，PCR）是一種體外核酸擴增系統，其原理類似DNA分子的天然復制過程，是將在待擴增的DNA片段和與其兩側互補的兩個寡聚核苷酸引物，經變性、退火和延伸若干個循環后，生物學中一種有助于DNA克隆及基因分析的必需工具。

PCR的工作程序實際上是一個在模板種脫氧核苷酸等存在的情況下，DNA聚合酶依賴的酶促合成反應。擴增的特異性取決于引物與模板DNA的結合。整個擴增過程分三步：①變性，加熱使模板裂而形成兩條單鏈；②退火，突然降低溫度后模板存在兩條模板鏈之間的結合，但由于引物的高濃度、物與模板之間；③延伸，在DNA聚合酶及鎂離子等的存在條件下，從引物的結合單核苷酸，形成與模板鏈互補的新的循環，樣本中的DNA量就增加一倍，新形成的40個循環后，DNA 可擴增106～109倍。

二、儀器及試劑

1.儀器：PCR儀、臺式離心機、移液器及吸頭、2.試劑：

10X PCR 緩沖液配制（部分隨Taq

250～500 mmol/L

100～500 mmol/L

15～20 mmol/L

0.5%

1mg/L

其它試劑：模板DNA、dNTP 混合液、凝膠、等

DNA擴增 DNA、一對已知序列的寡核苷酸引物和四DNA引物按堿基配對原則互補結合，也結構簡單等特點，DNA鏈。完成以上三步為一個循環，每經過一個DNA鏈又成為下一輪循環的模板。現用圖示說明PCRPCR薄壁管、電泳儀等： KCl Tris-Cl（pH8.4）

MgCl2

Tween-20

BSA Taq聚合酶、上游和下游寡核苷酸引物、瓊脂糖33

2n 倍。該技術已成為分子DNA主要的結合發生在引: 3 ′端開始，經過25～ 雙鏈間的氫鍵斷 原理酶提供）

三、操作步驟

1.PCR 體系（40ul）：

4ul

10XPCR 緩沖液

4ul

25mM MgCl2（根據不同公司PCR 緩沖液的不同而定）

Xul

模板DNA ≥50ng

1ul

上游引物（50-100ng）

1ul

下游引物（50-100ng）

1ul

dNTP Mixture（終濃度

0.4 ul

Taq聚合酶

加ddH2O至40ul

視PCR儀有無熱蓋，不加或添加石蠟油。

2.將上述試劑依次加入PCR薄壁管。加樣后用手輕彈混勻，使反應成分集于管底。

3.PCR反應熱循環程序設置：

（1）95℃

300s

變性

（2）94℃

45s

變性

（3）55℃

45s

退火（根據不同引物可能有不同退火溫度）

（4）72℃

45s

延伸（每分鐘可延伸

重復步驟2-4共 30 循環

（5）72℃

600s

延伸

反應結束后短暫離心，吸取少量（10ul）進行分析，其余置

4℃保存備用。

4.瓊脂糖凝膠電泳檢測PCR產物。

20－200uM）1kp）6000 rpm 15 sec

離心

四、注意事項：

1.PCR 體系所加成分的實際用量應根據實驗者選用的該成分的終濃度及所擁有的貯備液濃度進行核算。

2.加樣時要認真,吸頭垂直進入試劑管，每加完一樣要換一個吸頭，同時在已加的樣品前做個記號以防止錯加或漏加，避免污染。

3.Taq聚合酶（置于冰盒上）應最后加入，盡量減少室溫接觸機會。加酶時吸頭深入不可過深，酶量不能過多。

五、影響PCR的主要因素

1.模板DNA

單鏈、雙鏈DNA白水解酶等的污染。模板用量依具體實驗而定，PCR反應時模板變性要充分。

2.PCR引物

PCR引物設計是否成功是能否獲得高質量應用時，需注意以下重要環節：

（1）PCR引物的長度約為以使它們在相近的溫度下與其互補序列結合。隨機的，應避免連續出現4個以上的單一堿基，否則會使引物在G+C富集序列區錯誤引發。引物免選用T ,尤其應避免連續出現

（2）一般來說，PCR引物長度選擇24bp左右為宜。

（3）要避免引物分子自身序列互補，否則會形成發夾樣二級結構。兩個互之間的3，末端序列不能有明顯的互補性，以免形成引物二聚體。

（4）引物的熔點溫度（引物的GC/AT應與要擴增的模板

（5）引物的3，末端必須與模板嚴格互補，而

（6）目前在引物選擇中已廣泛應用計算機軟件，從基因序列，并對設計的引物在引物二聚體形成、自身互補性及特異性等方面進行分析評價。PCR

18～30個核苷酸，并且成對引物間的2個以上T500bp時，引物長度選擇 Tm值）要適當。DNA相當或略高些。一般熔點溫度以大于DNA樣品盡量純凈，不能有核酸酶、蛋一般為100ul反應液有105-106個目標分子。PCR產物最關鍵的因素之一。在設計和G＋C含量應相似。G+C含量應為45%～55%之間。堿基分布是尤其是不應在其3，端出現3個連續G或C，3，端堿基最好選用A、G、C,盡可能地避16-18bp；PCR產物≥5kb時，PCR引物相 Tm值與引物的堿基組成和長度有關；PCR55℃為宜。5，末端的要求可靈活些。EMBL或Genebank中查找有關

均可作為的模板。產物≤

（7）用于亞克隆的引物，常在引物的5，端加上限制性內切酶位點。為了保證內切酶有效酶切擴增產物，一般在酶切位點的5，端再加上幾個額外的堿基。

（8）引物的濃度，在終濃度為0.2～1.0 umol/L的范圍內產量基本相同，低于0.2 umol/L時會影響產量。但過高時一乃不經濟，二則會出現非特異擴增及增加引物二聚體的產生。

3.熱穩定DNA聚合酶（如Taq DNA聚合酶）

一般用量為2.5 U/100uL 反應體積。酶量過多易導致非特異性產物的產生。適溫度為75℃，在低溫下仍保留相當高的活性，易引起不完全配對的引物伸及引物二聚體的擴增延伸，所以應注意防止非特異性產物的出現。

4.dNTPs

PCR常用的dNTP濃度在50-200umol/L。四種

低則反應速度下降，過高則特異性下降，可根據具體實驗來確定最適的

5.PCR緩沖液

因PCR反應中的dNTP能與Mg2+結合，影響反應液中游離應按不同條件，確定合適的Mg2+濃度。一般在標準的Mg2+濃度約為1.5mmol/L。Mg2+離子濃度可顯著影響出現非特異擴增，過低則酶活性顯著下降。應用無核酸酶的及5mmol的二硫蘇糖醇（DTT）對酶有一定的保護作用。

6.PCR循環的溫度

預變性：起始變性的時間應該長些，以使變性充分。一般為不完全時，DNA雙鏈會很快復性，影響PCR反應，但若變性溫度太高（不宜超過會影響Taq酶的活性。

變性：一般為94℃ 30s或95℃ 20s。

引物退火：應根據具體反應中引物與模板的堿基配對情況及實驗的目的確定。一般為50-72℃。退火溫度增高會增強對不正確退火引物的識別，還能降低引物酸的錯誤延伸。

延伸：一般為72℃ 60-90s。最后一個循環后應在物合成的完整性。

7．平臺效應和PCR循環的次數

dNTPsPCR反應中（PCR的產量及產物特異性。BSA 72℃保留該類酶的最-模板的非特異延

dNTP濃度。Mg2+的濃度，所以dNTP濃度200umol/L），濃度高則Tween-20(0.05%～0.1%)94℃ 3-5min。變性95℃），3，端不正確核苷5min，以保證PCR產應等當量。濃度、在PCR基因擴增的后期，由于產物的堆積，將使原來產物以指數增加的速度變為平坦曲線，即所謂平臺效應。它的出現是由于PCR原料的不斷消耗、酶的穩定性的降低、終產物的阻滯效應及非特異性產物等多種因素造成的，所以選擇合理的循環次數，既能得到足夠量的PCR產物，又不要無意義地增加循環次數。

8.操作環境

避免環境污染和交叉污染，如核酸酶的污染、非目標DNA的污染等。

實驗九 瓊脂糖凝電泳分離與純化目的一、實驗原理

不同大小的片段分離位于不同的位置，的片段。有許多型號的低熔點瓊脂糖可在雙鏈DNA的解鏈溫度高于收DNA片段。該法的優點是可直接在熔化的凝膠中進行各種酶反應，如合成同位素探針、進行限制酶切割和連接反應等。

二、儀器及試劑：

1.儀器

電泳儀、凝膠成像系統、移液器、離心管、吸頭等。

2.試劑：

低熔點瓊脂糖、待純化的

三、操作步驟：

1.配制1％的瓊脂糖凝膠，在適當的位置切一條與加樣槽平行的槽，換低熔點瓊脂糖凝膠。

2.加樣，100V

DNA DNA酶切片段是基因工程中常用的手段。在電泳過程中切下目的片段并采用低熔點瓊脂糖回收法即可獲得目65℃時熔化成液體，在65℃，所以可以熔化凝膠而 DNA、凝膠回收試劑盒、去離子水或38

30℃時凝固成凝膠。由于DNA并不變性，在凝膠成液態時回TE（pH7.6）

分離和純化。

電泳，觀察所需片段是否移至低熔點膠內。3.在紫外燈下切含有DNA的低熔點膠，置1.5 ml離心管中，于70℃熱水中熔化。

4.按凝膠回收試劑盒說明書操作。

12.取適量純化好的目的DNA在 GeneQuant 中檢測，確定純度和濃度，其余樣品于-20℃保存。

四、注意事項：

1.配凝膠的三角瓶、電泳槽和配膠板要先沖洗干凈

實驗十

DNA重組

一、實驗原理

外源DNA與載體分子的連接就是DNA重組，這種重新組合的DNA在體外的連接重組是基因工程操作的核心技術之一，其本質是一個酶促反應過程。即在一定的條件下，DNA連接酶催化兩個雙鏈DNA用，形成磷酸二酯鍵的過程。常用的DNA連接酶有兩種：菌DNA連接酶。其中T4噬菌體DNA連接酶對底物的要求低，能更有效地連接末端，應用更廣泛。

T4噬菌體DNA連接酶催化DNA連接反應分連接酶通過ATP的磷酸與連接酶的賴氨酸的氨基形成酶―隨后從賴氨酸殘基轉移到DNA一條鏈的51端的磷酸基團上，形成磷酸―磷酸鍵。③鏈31端的羥基被活化，取代ATP后與DNA51端的磷酸根形成磷酸二酯鍵，完成DNA之間的連接。T4噬菌體DNA連接酶需要鎂離子和溫度和pH條件下進行連接反應。

二、儀器及試劑：

1.儀器：

臺式離心機、移液器、吸頭、恒溫水浴鍋等。

2.試劑：

T4 DNA連接酶、10×T4 DNA連接酶緩沖液、載體

三、操作步驟

1.外源DNA片段和載體DNA的連接

DNA51端磷酸和31端羥基之間相互作T4噬菌體DNA連接酶和大腸桿3步：①首先，ATP與T4ATP復合物。②被激活的并釋放出ATP作為輔助因子，DNA、外源DNA。DNA的平DNAAMPDNAAMP，在一定的 叫做重組子。片段的噬菌體

取1只無菌Ep管、用微量進樣器按下列順序加入各成分。

10×T4 DNA Ligase Buffer

2.5 ul

酶切后的DNA片段

*1

約0.3 pmol

酶切后的載體DNA *2

約0.03pmol

T4 DNA Ligase

ddH2O

*1 DNA片段的摩爾數應控制在載體

*2 相同末端的載體與DNA自身環化。

2.蓋好蓋子，用手指輕彈Ep

3.將反應管放入16℃過夜反應（4.取出約25ng的DNA連接液進行瓊脂糖凝膠電泳，片段和酶切DNA片段作電泳。

5.用0.1×TE將連接混合物稀釋至

四、注意事項

1.連接產物經鑒定后應迅速做轉化實驗。

2.根據具體情況調節酶的用量。平端連接或接頭連接都比黏端連接慢得多，而且酶的用量也增大。

3.單價陽離子或低濃度的聚乙二醇可提高平端連接的效率。

4.防止載體DNA自身環化，常用堿性磷酸酶處理線性載體，去掉載體的DNA片段的自身環化。

5.正確調整載體DNA和外源

五、相關問題

1.連接反應的影響因素

1ul

加至 25ul DNA摩爾數的3－12～16h）。鑒定連接結果，50ul，使用10～20ul DNA之間的比例有助于獲得高產量的重組產物。40

10倍。2s 以集中溶液。以未經連接的質粒 51?CDNA

片段進行連接時，應首先將載體進行去磷酸化處理，以防止其管數次，并于臺式離心機離心轉化大腸桿菌感受態細胞。磷酸以抑制

除了載體、供體的濃度及其比例等因素外，影響連接反應的因素還有很多，如緩沖液組分、連接溫度與時間、酶濃度、DNA濃度及片段末端的堿基序列等。

（1）連接緩沖液的影響

不同的公司提供的連接緩沖液可能有所不同，但大體上都含有以下組分：20-100mmol/L的Tris-HCl，較多用50mmol/L，pH的范圍在7.4-7.8，較多用7.8，目的是提供合適酸堿度的連接體系；10mmol/L的MgCl2，作用是激活酶反應；1-20mmol/L的DTT，較多用10mmol/L，作用是維持還原性環境，穩定酶活性，25-50ug/ml的BSA，作用是增加蛋白質的濃度，防止因蛋白濃度過稀而造成酶的失活。與限制酶緩沖液不同的是連接酶緩沖液還含有0.5-4mmol/L的ATP，現多用1mmol/L，是酶反應所必需的。

（2）pH的影響

一般將緩沖液的pH調節到7.4-7.8，較多用7.8。有實驗表明，若把pH為7.5-8.0時的酶活力定為100%，那么體系偏堿（pH為8.3）時僅為全部活力的65%；當體系偏酸（PH為6.9）時僅為全部活力的40%。

（3）ATP濃度的影響

連接緩沖液中ATP的濃度在0.5-4mmol/L之間，較多用1mmol/L。研究發現，ATP的最適濃度為0.5-1mmol/L，過濃會抑制反應。例如，5mmol/L的ATP會完全抑制平末端連接，黏端的連接也有10%被抑制；還有報道，當ATP的濃度為0.1mmol/L時，去磷酸載體的自環比例最大。由于ATP極易分解，所以當連接反應失敗時，除了DNA與酶的問題外，還應考慮ATP的因素。含有ATP的緩沖液應于-20℃保存，溶化取用后立即放回。連接緩沖液體積較大時最好分小管貯存，防止反復凍融引起ATP分解。與限制酶緩沖液不同的是，含ATP的連接緩沖液長期放置后往往失效，所以也可自行配制不含ATP的緩沖液（可長期保存），臨用時加入新配制的ATP母液。

（4）連接溫度與時間的影響

因為黏性末端的DNA雙鏈間有氫鍵的作用，所以溫度過高會使氫鍵不穩定，但連接酶的最適溫度又恰為37℃。為了解決這一矛盾，在經過綜合考慮后，傳統上將連接溫度定為16℃，時間為4-16h。現經實驗發現，對于一般的黏性末端來說，20℃ 30min就足以取得相當好的連接效果，當然如果時間充裕的話，20℃ 60min能使連接反應進行得更完全一些。對于平末端是不用考慮氫鍵問題的，可使用較高的溫度，使酶活力得到更好的發揮。

（5）酶濃度的影響

根據New England Biolabs公司對T4 DNA連接酶的定義，1U的酶可在16℃ 30min內連接20ul體系中Hind Ⅲ酶切片段（黏性末端為0.12umol/L 5,末端，此時DNA質量濃度約為300ng/ul）的50%。日常使用的DNA濃度比酶單位定義狀態低10-20倍，連接平末端時酶用量要比連接黏端大10-100倍，廠商為了滿足這一要求，又往往提供高濃度的酶（幾百個 41 單位/ul），所以進行黏末端連接時需先行稀釋。除了立即用于反應的部分可用酶反應緩沖液稀釋外，其余都應使用廠商提供的稀釋液。稀釋液的成分與酶保存緩沖液相同或類似，稀釋液中的酶能在長時間保持活力，也便于隨時取用。

（6）DNA濃度的影響

盡管有的實驗手冊上推薦使用0.1-1nmol/L的DNA濃度，但考慮到用質粒作為載體克隆時，最后要求得到環化的有效連接產物，所以DNA濃度不可過高，一般不會超過20nmol/L。相比較而言，以噬菌體、cosmid質粒為載體的克隆過程最后要求線性化的連接產物，所以，DNA的濃度可以高些，至少是接近推薦的濃度。此外，在用大質粒載體進行大片段克隆時，以及在雙酶切片段的連接反應中，DNA濃度還應降低，甚至是DNA的總濃度低至幾個nmol/L。另據研究，T4 DNA連接酶對DNA末端的表觀Km值為1.5nmol/L，所以，連接時DNA濃度不應低于1nmol/L。即應具有2nmol/L的末端濃度。

2.三種連接酶單位定義

（1）Weiss單位

連接酶單位最早是1968年由Weiss提出的Weiss單位，現也稱PPi單位。他的單位定義為：37℃ 20min內將1nmol的32P從焦磷酸根上置換到ATP分子上所需的酶量。現在大多數廠商仍使用這種單位。

（2）d（A-T）環化單位

由于Weiss單位定義中測試的是T4 DNA連接酶中除連接功能外的另一種磷交換功能，并且測試溫度高達30℃，與實際連接反應相比無論在哪一方面都有一定的差距，于是，1970年Modrich與Lehman提出了真正度量連接功能的d(A-T)環化單位，又稱外切酶抗性檢測。d（A-T）環化單位的定義為：30℃ 30min 內將100nmol/L的d（A-T）（約2kb長）轉化成抗外切酶的形式。

（3）黏性末端單位

與Weiss單位相比，d（A-T）環化單位更接近實際，但仍有一定的問題，例如，環化單位測試中用的是純AT片段，與實際連接中4種堿基隨機排列不符；再說，如果連接酶將片段連接成多聚體而末環化時，仍可能被外切酶組所切；除此之外，與實際上大多數連接反應使用的溫度16℃相比，30℃仍顯得偏高。為了衡量實際連接條件下的酶活力，New England Biolabs公司提出了最實用的黏性末端單位，它的單位定義為：16℃ 30min內將5,末端濃度為0.12umol/Lλ-HindⅢ 酶切片段的50%連接上。

實驗十一 動物組織細胞總RNA的提取

一、實驗原理

RNA是基因表達的中間產物，存在于細胞質與核中。對中占有重要地位。獲得高純度和完整的RNA 是很多分子生物學實驗所必需的，如雜交、cDNA合成及體外翻譯等實驗的成敗，在很大程度上取決于內的大部分RNA是以核蛋白復合體的形式存在，所以在提取質變性劑，迅速破壞細胞結構，使核蛋白與RNA分離，釋放出機溶劑處理、離心，使RNA與其他細胞組分分離，得到純化的總抑制內源和外源的RNase活性，保護RNA分子不被降解。中進行。可使用RNase抑制劑，如DEPC是RNase的強抑制劑，常用來抑制外源性。提取緩沖液中一般含SDS、酚、氯仿、胍鹽等蛋白質變性劑，也能抑制并有助于除去非核酸成分。

本實驗介紹異硫氰酸胍法和TRIzol法提取動物組織總

二、儀器和試劑

1.儀器：

超凈工作臺、高速冷凍離心機、電泳儀、紫外分光光度計、吸頭、Ep管、玻璃勻漿器、試管、玻璃器皿洗凈后置180℃烘烤8h；不耐高溫的器皿（如塑料制品）應用2h,70～80℃烘烤干燥，120℃高壓20min，再70～80

2.試劑：

(1)細胞裂解液：

異硫氰酸胍

4mol/L

檸檬酸鈉（pH7.0）

25mmol/L

十二烷基肌氨酸鈉

0.5%

RNA進行操作在分子生物學NorthernRNA的質量。由于細胞RNA時要利用高濃度的蛋白RNA。再通過酚、氯仿等有RNA。在提取的過程中要RNase的環境RNase活RNase活性。RNA并通過電泳 進行鑒定。振蕩器、移液器、0.1% DEPC浸泡 因此提取必須在無凝膠成像系統、℃烘烤干燥方可使用。

β-巰基乙醇

0.1mol/L

稱取檸檬酸鈉0.64g，十二烷基肌氨酸鈉0.415g，吸取β-巰基乙醇0.7ml，用無Rnase的蒸餾水溶解，定容至50ml。然后取以上配制的溶液(CBS液)33ml，異硫氰酸胍 25g,混合，完全溶解后4℃保存備用。

(2)10×凝膠緩沖液：

嗎啉代丙璜酸（MOPS）（pH7.0）

200mmol/L

NaAc

EDTA(pH 8.0)

過濾除菌后避光保存。

（3）5×變性上樣緩沖液：

水飽和的溴酚藍

500mmol/LEDTA(pH 8.0)

甲醛（37%）

甘油

甲酰胺

10×凝膠緩沖液

加無RNase水至10ml，4℃可保存

（4）TRIzol RNA抽提試劑

（5）2mol醋酸鈉

（6）0.1% DEPC

(7)平衡酚：氯仿：異戊醇（（8）平衡酚、氯仿

（9）無水乙醇、70%乙醇、異丙醇

100mmol/L

10mmol/L

16μl

80μl

720μl

2ml

3084μl

4ml 3個月。25：24：1）

(10)無RNase水

三、操作步驟

（一）異硫氰酸胍法（PLT）

1.取新鮮動物組織0.1～0.2g置于組織勻漿器中，加入預冷的細胞裂解液1ml,在冰浴中迅速勻漿15～30s，以充分研碎組織。然后將細胞懸浮液吸入另一試管中。

2.加入2mol醋酸鈉（pH4.0）120μl，充分混勻。

3.加入1.2ml酚：氯仿：異戊醇，充分混勻搖振10s，冰浴15min。

4.將混合物轉移至1.5ml Ep管中，4℃，離心10 000r/min,20min.5.移取上層水相至另一Ep管中，加入等體積的異丙醇，靜置?C20℃，30min沉淀RNA.6.4℃，離心12 000r/min，15min.7.棄上清液，加入70%乙醇400μl,洗滌RNA沉淀物；如果RNA沉淀物被懸浮，則4℃離心10 000r/min，10min。

8.棄上清液，自然干燥，但應避免沉淀完全干燥，否則RNA難以溶解。

9.加入100μl無RNase水重懸RNA，或加1ml無水乙醇和1/10體積3mol醋酸鈉（pH4.0），?C70℃保存。

（二）TRIzol試劑提取RNA

1.取新鮮動物組織0.1～0.2g置于組織勻漿器中，加入預冷的Trizol液 1ml 于玻璃勻漿器中，在冰浴中迅速勻漿15～30s，以充分研碎組織。然后將細胞懸浮液吸入另一1.5ml Ep管中，于室溫下靜置5min。

2.加入200μl氯仿，劇烈振搖15s混勻后，室溫靜置3min。

3.4℃，10 000r/min離心15min，RNA分布于水相中。

4.將上層無色水相轉移到另一Ep管中，加入500μl 異丙醇，室溫靜置10min。

5.4℃，10 000r/min離心10min。

6.棄上清液，用1ml 75%乙醇洗滌RNA沉淀物，4℃，7500r/min離心5min。

7.棄上清液，室溫干燥15min.45

8.向干燥過的沉淀物中加入200μl DEPC處理水（無核水）溶解沉淀物，于-20℃保存備用。

（三）RNA檢測

1.在紫外分光光度計上檢測RNA濃度及純度。

方法同實驗四，用DEPC處理水校正零點；用DEPC處理水稀釋RNA樣品；讀取OD260、OD280值及OD260/OD280的比值。

2.瓊脂糖凝膠甲醛變性電泳檢測

（1）制備凝膠（1.2%）。稱1.2g瓊脂糖，加72ml DEPC處理水，加熱熔化。冷卻至60℃，在通風櫥內加入10×凝膠緩沖液10ml，甲醛（37%）18ml，混勻后，倒膠。

（2）制備樣品。在離心管中，將RNA樣品與5×變性上樣緩沖液以4：1溫育5～10min，迅速在冰上冷卻5min，離心數秒。

（3）上樣前凝膠須預電泳5min，隨后將樣品卷入上樣孔。以5V/cm的電壓電泳2h.。

（4）待溴酚藍遷移至凝膠長度的2/3～4/5處結束電泳。將凝膠置于溴化乙啶溶液μg/ml，用0.1mol/L乙酸胺配制）中染色約30min。

（5）在凝膠成像系統觀察并分析。

四、注意事項

1.RNA是極易降解的核酸分子。因此提取總RNA必須在無RNase 環境中，戴口罩、手套、使用無RNase污染的試劑、材料、容器。

2.所有溶液應加DEPC至0.05%～0.1%，室溫處理過夜，然后高壓處理或加熱至小時或60℃過夜，以除去石油殘留的DEPC。

3.所用的化學試劑應為新包裝，稱量時使用干烤處理的稱量勺，所有操作均應在冰浴中進行，低溫條件可減低RNA酶活性。

4.根據RNA樣品的紫外吸收OD值，可計算出RNAd 濃度。

單鏈RNA [ssRNA]=40×（OD260-OD310）×稀釋倍數

純RNA OD260 / OD280比值通常在1.7～2.0。若比值低于1.7,說明有蛋白質等污染，/氯仿在抽提。若比值低于2.0,表明有鹽、胍、糖可用LiCL選擇沉淀RNA以除去雜質。

65℃1.5～（0.570℃ 1 應用酚 混勻。

5.RNA樣品電泳后，可見28S、18S及5S小分子RNA條帶，則說明完整性好。若有降解可能是操作不當或污染了RNase.。28S和18S RNA比值約為2：1,表明RNA無降解。如比值逆轉，則表明RNA降解。電泳中如果在28S 后方還有條帶，表明有DNA污染，應用DNase處理后再進行純化。

主要參考書：

1..金冬雁等譯.分子克隆實驗指南.第二版.北京：科學出版社，1995

2.子穎等譯.精編分子生物學實驗指南

3.周俊宜編.分子生物學基本技能和策略

4.姜泊等編.分子生物學常用實驗方法

5.劉進元等編.分子生物學實驗指導

.科學出版，.科學出版社.北京：人民軍醫出版社，.北京：清華大學出版社，47

1996.2002.

第三篇：分子生物學實驗室的器材配置

分子生物學實驗室的器材配置

分子生物學作為基因工程的上游技術，其實驗的成果和準確性將決定下游所有的步驟和最終的實驗結果。所以構建一個完備的分子生物學實驗室是非常重要的，以下就讓我們來看看構建一個分子生物學實驗室需要哪些儀器？

1.冰箱： 根據藥品、試劑及多種生物制劑保存的需要，必須具備不同控溫級別的冰箱。

最常使用的有：4℃、-20℃、-80℃冰箱。4℃適合儲存某些溶液、試劑、藥品等。-20℃適用于某些試劑、藥品、酶、血清、配好的抗生素和DNA、蛋白質樣品等。-80℃適合某些長期低溫保存的樣品、大腸桿菌菌種、純化的樣品、特殊的低溫處理消化液等的保存。0-10℃的層析冷柜適合低溫條件下的電泳、層析、透析等實驗。

2.培養箱：37℃恒溫箱用于細菌的平板培養及分子生物學實驗。

3.恒溫培養搖床：用于大腸桿菌等生物工程菌種的擴增。

4.水浴鍋：用于保溫并進行各類實驗。

25-100℃水浴搖床可用于分子雜交試驗，各種生物化學酶反應等試驗的保溫。

含低溫的水浴槽可以用于分子生物學的質粒與基因片段的連接等實驗及用于42度的大腸桿菌感受態的熱激。

5.烘箱：主用于烘干實驗器皿，有些需要溫度高些，有些需要溫度低些。用于RNA方面的實驗用具，需要在250℃烤箱中烘干，有些塑料用具只能在42-45℃的烤箱中進行烘干。

6.超純水機：隨著分子生物學的飛速發展，許多實驗對水純度的要求越來越高，用自來水、蒸餾水、離子交換水、反滲透純水做為供水，磁鐵耦合齒輪泵作用使水循環。用于PCR、PCR氨基酸分析、DNA測序、酶反應、組織和細胞培養等。

7.蒸汽消毒鍋：分子生物學所用大部分試劑，而且實驗用具都應嚴格消毒滅菌。用于小批量物品的隨時消毒。大批實驗物品、試劑、培養基可使用大型消毒且定時進行消毒。

8.濾器濾膜：不耐高溫、高壓的試劑用其處菌。

9.各種天平：臺秤、精密電子分析天平，用于精確稱量各類試劑。

10.液體體積的度量：量筒、移液管、微量取液器、刻度試管、燒杯、錐形瓶等。

11.pH計：測定溶液中H+的直接電位的儀器，主要通過一對電極，在不同的pH溶液中產生不同的電動勢用pH值表示出來；pH試紙：只適用于培養液、酚飽和液、緩沖液或其它試劑溶液的pH值的粗略估計。而大部分試劑的配制要求嚴格的pH值，需精確度高（小數點后兩位）的pH計。

12.分光光度計：光密度、分光光度計是利用物質在可見光和紫外線區域中的吸收光譜來鑒定該物質的性質及其含量的一種儀器。它是由光源、單色器、吸收池、接收器、測量儀表或顯示屏幕所組成。OD值是許多溶液中溶質定量的方便指標之一，通過所產生的單色光而測定某一溶液對該單色光的吸收值，利用它可進行核酸溶液定量和純度的初步判斷。OD值也可以作為菌濃的檢測指標。

13.高速離心機：最大轉速25000 r/m，最大離心力89000g。有冷凍和常溫兩種，多用于制備和手收集微生物、細胞碎片、細胞、大的細胞器、硫酸銨沉淀物以及免疫沉淀物等。

14.超凈工作臺：內有紫外燈、照明燈、還應有酒精燈火焰、75%乙醇等滅菌的設備，是一種提供局部潔凈度的設備。其原理是鼓風機驅動空氣，經過低、中效的過濾器后，通過工作臺面，使實驗操作區域成為無菌的環境。

15.電泳系統：電泳技術是檢測、鑒定各種生物大分子的純度、含量及描述它們的特征，甚至還是分離、純化、回收和濃縮樣品的工具之一。

電泳系統分為電源和電泳槽，電源需經穩流通過穩壓器，既能提供穩定的直流電，又能輸出穩定的電壓；水平式電泳槽：一般分為微型電泳槽和大號水平式電泳槽

16.PCR儀：Polymerase Chain Reaction儀，也稱DNA熱循環儀，基因擴增儀，它是使一對寡核苷酸引物結合到正負DNA鏈上的靶序列兩側，從而酶促合成拷貝數百萬倍的靶序列DNA片段，它的每一循環包括在三種不同溫度進行的DNA變性，引物復性，DNA聚合酶催化的延伸反應三個過程。需要說明的是，有些實驗室可能還需要梯度PCR儀或實事定量熒光PCR儀來進行一些特殊的分子生物學實驗。

17.凝膠成像分析系統：不用紫外和EB、操作安全、直接讀取數據。

18.其他設備

1.微波爐：便于一些溶液的快速加熱和定溫加熱，電泳瓊脂糖凝膠配制、溶化等。

2.制冰機：用于制造大多數核酸、蛋白質的實驗操作所需的低溫環境，以減少核酸酶或蛋白質酶的水解。

3.層析裝置：（色譜分離）是一種分離多組分混合物的有效物理方法。

真空印記系統，DNA合成/測序儀：這些都是對核酸進行深入研究的必備儀器。

4.磁力攪拌器：多角度旋轉混勻器、快速振蕩混合器：用于混合儀器。

5.組織勻漿器：超聲組織及細胞破碎器，用其進行樣品的分離提純實驗。

6.通風櫥：很多溶劑能逸出毒氣，必備柜，放射性試驗還要有有機玻璃屏蔽。

7.玻璃蒸餾器、電熱加帽、變壓器：用于酚等有機溶劑的蒸餾。

8.Tip頭、Eppendorf管：

微管移液器tip頭（吸液尖）、Eppendorf管（微量離心管）可洗滌，硅化消毒后反復使用。對一些要求嚴格的實驗，如RNA的提取、保存等操作，應使用新的消毒tip頭與Eppendorf管。另外還應備有常用規格的離心管（1000ml、500 ml、250 ml、50 ml、7 ml等）及96孔、24孔、12孔、6孔的細胞培養塑料平板等。

9.小型設備、用具：

定時器、濾膜、保鮮膜、防護眼鏡鴨嘴鑷；常規的玻璃或塑料器皿，包括平皿、試管、燒杯、量瓶、試劑分液漏斗、避光保存的試劑應使用棕色試劑瓶，如飽和酚、巰基乙醇等；記號筆、各種手套（PE、乳膠、家用、防酸的等）。

第四篇：分子生物學實驗室常用儀器物品英文詞匯

口罩 respirator

耐酸橡膠手套 rubber gloves

(acid resistance)

鉗子 pliers

扳子 spanner

螺絲刀 screw driver

多用電源插座 multi-purpose socket

復印紙 copy paper

筆記本 note book

記號筆 marker pen

夾子 clip

擦鏡紙 wiper for lens

標簽紙

paper label

打火機 lighter

溫度計 thermometer

定時器 timer

棉線（細繩）cotton rope

橡皮圈 rubber band

清潔布 rag

牛皮紙 kraft paper

塑料筐 plastic basker

塑料桶 plastic basin

保溫桶 thermos

不銹鋼盤 stainless steel tray

搪瓷盤 enamel tray

燒杯 beaker

三角瓶、燒瓶 flask

容量瓶 volumetric flask

量筒 graduated cylinder

移液器 pipette

移液管 serological pipette

吸耳球 bulb for pipet

移液管架 pipet rack

離心管架 centrifuge tube rack

試驗管 試管架 藥匙 洗瓶 玻璃攪棒 研缽 研棒 冰盒 液氮罐

培養皿 皮氏培養皿培養三角瓶接種環 接種針 過濾滅菌器鑷子 剪刀 解剖刀片 解剖刀柄 酒精燈 樣品推車

封口膜 塑料膜 保鮮膜 鋁箔紙 脫脂棉

鐵架臺 石棉網 玻璃干燥器三角漏斗 布氏漏斗 玻璃漏斗 酸堿滴定管

tube

test tube rack lab spoon

plastic wash bottle glass stirring stick mortars pestles ice box Dewar flask

culture dish petri dish culture flask inoculating loop inoculating needle syringe filters forceps scissors scalpel blade scalpel handle alcohol burner lab cart

parafilm wrap and dispenserplastic film cling film aluminum foil absorbent cotton

iron support asbestos board glass desiccator funnel

buchner funnel glass funnel Burette

天平分析天平稱量瓶 稱量紙 比重計 酸度計 pH試紙 電磁攪拌器 電磁攪棒 勻漿器 搖床 水浴搖床 渦旋振蕩器 離心機 烘箱 低溫水浴 冰箱 超低溫冰箱 培養箱 分光光度計 石英比色杯 balance

analytical balance weighting bottle weighing paper hydrometer pH meter

pH indicator paper magnetic stirring magnetic stirring bar homogenixer shaker

reciprocating shaker bath vortex mixer centrifuge oven

refrigerating circulator refrigerator

安全帽 工作服 工作鞋 隔熱手套 體重計

safety helmet lab coat footware

heat insulation gloves body weight scales

升降臺

lab jack

ultra-low temperature freezer incubator

spectrophotometer quartz cuvette

超聲波清洗器 ultrasonic cleaner 雜交爐

hybridization oven hybridization incubator

第五篇：分子生物學實驗室

分子生物學實驗室（P2設計）

1.功能：進行分

組織培養前實驗室設計

標簽：產經/公司實驗室 微生物 潔凈室 設計說明 通風柜 實驗臺 家俱

組織培養前實驗室設計

在進行植物組織培養工作之前，首先應對工作中需要哪些最基本的設備條件有個全面的了解，以便因地制宜地利用現有房屋，或新建、改建實驗室。實驗室的大小取決于工作的目的和規模。以工廠化生產為目的，實驗室規模太小，則會限制生產，影響效率。

在設計組織培養實驗室時，應按組織培養程序來沒計，避免某些環節倒排，引起日后工作混亂。植物組織培養是在嚴格無菌的條件下進行的。要做到無菌的條件，需要一定的設備、器材和用具，同時還需要人工控制溫度、光照、濕度等培養條件。

實驗室設計原則：保證無菌操作，達到工作方便，防止污染。

實驗室組成：化學實驗室、洗滌菌室、無菌操作室（接種室）、培養室、細胞學實驗室、其他小型儀器設備。

1)化學實驗室（準備室）：完成所使用的各種藥品的貯備、稱量、溶解、配制、培養基分裝等。主要設備：藥品柜、防塵櫥（放置培養容器）、冰箱、天平、蒸餾水器、酸度計及常用的培養基配制用玻璃儀器.2)洗滌、滅菌室：完成各種器具的洗滌、干燥、保存、培養基的滅菌等。

主要設備：水池、操作臺、高壓滅菌鍋、干燥滅菌器（如烘箱）等。

3)無菌操作室（接種室）：主要用于植物材料的消毒、接種、培養物的轉移、試管苗的繼代、原生質體的制備以及一切需要進行無菌操作的技術程序。

主要設備：紫外光源、超凈工作臺、消毒器、酒精燈、接種器械（接種鑷子、剪刀、解剖刀、接種針）等。

接種室宜小不宜大，一般7～8平米，要求地面、天花板及四壁盡可能密閉光滑，易于清潔和消毒。配置拉動門，以減少開關門時的空氣擾動。接種室要求干爽安靜，清潔明亮。在適當位置吊裝1～2盞紫外線滅菌燈，用以照射滅菌。最好安裝一小型空調，使室溫可控，這樣可使門窗緊閉，減少與外界空氣對流。接種室應設有緩沖問，面積1m2為宜。進入無菌操作室前在此更衣換鞋，以減少進出時帶入接種室雜菌。緩沖間最好也安一盞紫外線滅菌燈，用以照射滅菌。

4)培養室：培養室是將接種的材料進行培養生長的場所。培養室的大小可根據需要培養架的大小、數目、及其他附屬設備而定。其設計以充分利用空間和節省能源為原則。