血清γ-球蛋白的分離純化
一、目的與要求
1、掌握分離純化蛋白質(zhì)的基本原理和基本過程。
2、熟悉鹽析、離心、層析、電泳等生化基本技術(shù)在蛋白質(zhì)分離純化中的綜合應用。
3、學會設(shè)計和制定分離純化蛋白質(zhì)的實驗方案,技術(shù)路線,質(zhì)量監(jiān)控和保證措施。
二、實驗原理
血清蛋白有300多種,可粗略的分為清、球蛋白兩大類,γ球蛋白只是球蛋白中的一個亞類。欲用常規(guī)方法獲得,可先用半飽和硫酸銨從血清中鹽析出球蛋白,接著用葡萄糖凝膠G-25脫去球蛋白中的鹽分最后用DEAE纖維素陰離子交換柱便可直接從脫鹽的球蛋白溶液中分離純化出γ球蛋白,其反應機理如下:
C2H5
H
纖維素-O-(CH2)2-N(C2H5)2
纖維素-O-(CH2)2-N+……H2PO4
H++H2PO4
DEAE纖維素離子交換柱
COOH
C2H5
α、β、γ球蛋白
NH2
COO
H
經(jīng)過鹽析和脫鹽的球蛋白液
纖維素-O-(CH2)2-N+…α和β
G
PH6.3
NH2
交換到柱上的α和β-球蛋白
H2PO4
COOH
γ-球蛋白
NH3+
被DEAE柱分離純化的γ-球蛋白
被柱層析交換結(jié)合的α球蛋白和β球蛋白,可通過增加洗脫液的離子強度或降低洗脫的pH值(也可兩者同時改變),使其分部洗脫下來而被純化。純化前后的γ球蛋白可用電泳方法進行比較鑒定。
三、儀器和材料
儀器:離心機,1.5×40cm層析柱,層析架或滴定臺,核酸-蛋白檢測儀,部分收集器,紫外分光光度計,色譜柱,電泳槽,電泳儀。
材料:馬血清,Sephadex
G-25×200g,DEAE-32×200g。
四、實驗步驟
(一)分離純化步驟
1、取3mL,4℃預冷血清,加入3mL
4℃預冷的飽和硫酸銨。邊滴邊搖。
2、靜置大于10min后,3500rpm離心15min,棄去上清液,將沉淀溶于少量的生理鹽水。從中取0.5mL用于測定蛋白質(zhì)含量。
3、將剩余的樣品上Sephadex
G-25柱,用0.02
mol/L
pH6.5的NH4AC緩沖液洗脫,每管收集3
mL,用于繪制洗脫曲線,選擇顏色最深(即濃度最高管)的取0.5mL留待電泳用。
4、將剩余的蛋白質(zhì)溶液上已平衡好的DEAE-32柱(裝一半的柱子),用0.02
mol/L
pH6.5
NH4AC緩沖液洗脫,用干凈的試管收集,并用20%磺基水楊酸檢測是否有蛋白流出,并繪制洗脫曲線,收集的蛋白質(zhì)溶液即為γ球蛋白(留少量電泳用,0.5ml測[Pr])。
5、柱子再生。先用0.3mol/L高鹽緩沖液,再用0.02mol/L緩沖液平衡。
(二)電泳步驟
1、安裝垂直板電泳槽,按表配制分離膠溶液。用滴管吸取分離膠溶液,沿管壁注入玻璃板至距上端3cm處(插梳為準)
2、立即用滴管沿凝膠管壁加人蒸餾水約0.5cm高度,加水時應注意減少膠液表面的震動與擴散。加蒸餾水的目的,隔離空氣中的氧和消除凝膠柱表面的彎月面,使凝膠表面平坦(加水時切勿呈滴狀滴入膠液)。
3、靜置30分鐘,在凝膠表面與水之間出現(xiàn)清晰的界面,表示聚合已完成(注:剛加水時看出有界面,后逐漸消失,等再看出清晰界面時,表明凝膠已聚合)。用滴管吸去凝膠管的水層,并用濾紙條(無毛邊)輕輕吸去凝膠表面殘留的水分,注意不要損傷已聚合的凝膠表面。
4、按表制備濃縮膠,沿管壁加入濃縮膠,插上梳子,靜置15分鐘,待凝膠聚合后,待用。
5、加入10倍稀釋的甘氨酸一Tris緩沖溶液于電泳槽中,用注射針排除樣品孔中的氣泡,樣品與樣品處理液1:1混合后,用微量注射器上樣。
6、將上電泳槽的電極接至電泳儀的負極,下電泳槽的電極接至電泳儀的正極,接通電源,剛開始5分鐘內(nèi)6-7
mA/板,待示蹤染料遷移到下口約0.5cm處時,就可停止電泳,切斷電源(電泳時間約為
2/小時左右)。
7、剝膠
取下玻璃板,用帶有10cm長的注射針頭,內(nèi)盛蒸餾水作潤滑劑。將針頭插人膠與玻璃板之間,邊注水邊慢慢推針前進,靠水流壓力和潤滑作用使玻璃板與凝膠分開。
8、固定,染色與脫色
固定染色液染色過夜,用脫色液脫色.9、染色,加入染色液,染色過夜。
10、拍照,記錄結(jié)果。
五、實驗結(jié)果與分析
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血清樣由于蛋白質(zhì)種類較多,區(qū)帶不清。脫鹽后,樣品中剩余蛋白質(zhì)為α、β、γ-球蛋白,從結(jié)果中可以看到幾條較為明顯的區(qū)帶。γ-球蛋白的電泳結(jié)果顯示其分離的較為純凈。
六、注意事項
1、上樣前要將使用過的柱子重生。
2、上樣時要注意3個相切:緩沖液與柱床表面相切;樣品與柱床表面相切;洗樣時緩
沖液與柱床表面相切。
3、用瓊脂糖封膠時一定要封延時,防止漏膠。
4、配膠時要按照順序加樣,配完后要立刻混勻。
5、剝膠時要在水沖洗的情況下進行。