第一篇：解剖學與生理學實驗總結

解剖學與生理學實驗總結

與人體解剖學與生理學課程相對應的，在這學期我們也做了一些解剖生理學的相關實驗。雖然我們不是專業學醫的，但這個實驗也是要自己動手真的去解剖蟾蜍和家兔。通過對每一個解剖實驗的預習，操作，對結果的分析，很好的鞏固了生理學繁瑣的知識點，這一學期，主要是對蟾蜍的實驗，通過對蟾蜍的解剖，學會了對于簡單標本的制作，影響骨骼肌的因素，離體蛙心的灌流和對心動周期的觀察。通過對蟾蜍的實驗，在某種程度上來說真的是鍛煉了我們的膽量，不僅是女生男生也如是。其實對于實際操作來講，難度不是很大，我們組的操作一直都還算順利，當然也有一些磕磕絆絆，其中比較讓我們糾結就是結扎問題，尤其是在進行離體蛙心灌流時，線很容易扎不緊，插管就會容易脫落，然后插管部分又要重新做，每次實驗扎線都要花費很多時間，慶幸的是，沒有在蛙心離體之后插管才掉，那樣的話整個實驗都要重新做了，我們基本上每次實驗都只用了一只青蛙。在解剖實驗中，對于一些較困難的實驗，我們都是以小組的形式來完成，像影響骨骼肌收縮的因素，離體蛙心灌流，還有后面的家兔實驗，我們在看相關錄像的時候，覺得操作也不是很難，但是操作中也需要操作者之間的配合才能順利完成實驗，也因為配合的不是很好，在實驗中也浪費了很多時間。有了之前對蟾蜍的解剖的基礎，在對家兔實驗時，對于實際操作已經不是什么困難的事，但由于兩個的身體結構有很大不同，在對于神經的分辨和血管的確定時還是花費了很多時間。

一個學期很快就過去了，還記得在第一次實驗時，面對蟾蜍，班上的每個人都是滿心的驚恐，但在幾次試驗后，已經完全沒有當時的膽小，都很認真的去做實驗，去分析。在這個過程，通過對實驗結果的分析和討論，了解了對于實驗的分析，不是簡單的羅列結果，而是需要根據原理，對實驗數據進行分析最后給出結果，并且通過這些分析，對生理和解剖知識的學習更加深入，加深了對這些知識點的印象。就我個人來講，這樣的課程設置針對學生對于知識的學習并不是很深入起到了很大的鞏固效果，此次生理學實驗對于我來說，更加珍貴的事這個過程，除了學醫的學生，應該很少有專業會安排學生進行解剖實驗，解剖實驗讓我了解了更多醫學的知識，我覺得這是在日常生活中也可以用到的。

第二篇：生理學實驗總結

生理學總結

本學期，我上了九次生理學實驗課。通過課程的學習，我了解了基本的人體解剖特征，基本的生理學實驗方法，鍛煉了動手能力。

第一次課，我們做了ABO血型測定。我們了解了ABO血型系統和抗體抗原的知識。從一開始的不敢扎到扎破。第二次課，我們觀看了兩個視頻，分別是從腹部和背部解剖人，介紹了人體各個器官的位置及特點，其中印象最深刻的是脂肪是微黃色的，胃上附著著脂肪網狀囊，可以保護器官不受太大沖擊。而且做實驗的人精湛的技術也給了我很深的印象。第三次課和第四次課，我們做了蟾蜍腓腸肌標本。看視頻時，覺得做起來很簡單，剝皮什么的都很快就可以完成。實際做的時候，發現首先剪斷胸骨就很難，而且剝皮也很難，筋膜和肌肉有時也很難分清去，分離神經的時候還要扒開肌肉。通過這次實驗，我掌握了生理實驗器械的基本使用方法最后我沒有做成功，因為沒有及時用任氏液保持神經、肌肉的活性，用鋅銅弓刺激神經時，肌肉沒有反應。我還學習了單收縮和完全收縮的區別，強直收縮等。第五次課時，我們做了蛙心提前收縮與代償間隙的實驗，這次蛙心是沒有離體的，我們做得比較好。第六次實驗，我做了離體蛙心灌流，插管很不容易插入，最后做的是仿真。第七次實驗，我們測量了人的心電圖，了解了自己的心率。第八次課，我們做了一只哺乳動物——兔，它比我想象的大很多，體溫度比較高。靜脈注射麻醉劑很艱難，兔子掙扎地很厲害。我們忘記在做動脈插管之前夾上止血鉗，導致了大出血，濺了同學一身。第九次課，仿真實驗。

我覺得生理學實驗難度適中，動手較多，很有意思，希望以后自己能更好地完成這類實驗。

第三篇：解剖學實驗教案

實驗一 上皮組織、結締組織、肌肉組織和神經組織

【實驗目的】

1、掌握結締組織的結構特點，了解上皮組織的分布，比較各類上皮組織結構與功能特點。

2、掌握結締組織的結構特點、軟骨組織的結構與分類、骨組織的結構，了解疏松結締組織的基本構成。

3、掌握三種肌肉組織結構特點，比較三類肌肉組織結構與功能特點。

4、掌握神經元的結構特點、神經纖維結構與分類。【實驗內容】

1、觀察單層上皮組織、復層上皮組織、柱狀上皮組織的結構特點；

2、觀察疏松結締組織、致密結締組織、骨組織的結構特點；

3、觀察三種肌肉組織的結構特點；

4、觀察神經元，運動神經末梢的結構特點。【實驗學時】 4學時

【實驗方法】演示法、觀察法

【實驗材料與器具】 顯微鏡，層上皮組織、復層上皮組織、柱狀上皮組織、疏松結締組織、致密結締組織、骨組織切片、平滑肌、骨骼肌、心肌、神經元、運動神經末梢切片 【實驗作業】

1、繪制在顯微鏡下觀察到的單層扁平上皮圖。

2、繪制在顯微鏡下觀察到的疏松結締組織圖。

3、繪制在顯微鏡下觀察到的骨骼肌組織縱切圖。

4、繪制在顯微鏡下觀察到的神經元圖。

實驗二 運動系統—骨與骨連接、骨骼肌

【實驗目的】

1、觀察四種形態骨，掌握骨的分類方法及形態結構特點；

2、掌握人體全身骨的組成及特點；

3、掌握人體上肢骨、下肢骨、軀干骨和頭顱骨的組成及各骨的名稱；

4、掌握全身各骨的結構特點及各骨的主要骨性標志；

5、通過觀察肌肉標本或模型，能辨認出全身主要肌肉，進一步了解其位置、形態和起、止點；

6、理解全身主要肌肉的功能。【實驗內容】

1、觀察骨的一般形態和結構；

2、觀察全身各骨；

3、全身主要的骨骼肌。【實驗學時】4學時

【實驗方法】演示法、觀察法

【實驗材料與器具】全身骨骼模型和標本 【實驗作業】

1、腦顱骨共有幾塊，分別寫出其名稱。

2、說明脊椎骨各部分的特點。

3、與吸氣有關的肌肉主要有那些？

4、與肩關節運動有關的肌肉有那些？

5、簡述胸鎖乳突肌的其止點及其功能。

實驗三 內臟系統的形態觀察

【實驗目的】

1、觀察消化器官模型，了解消化系統的組成和其各器官的位置、形態、結構；

2、觀察呼吸器官模型，了解呼吸系統的組成和其各器官的位置、形態、結構；

3、觀察循環器官模型，了解循環系統的組成和其各器官的位置、形態、結構；

4、觀察泌尿器官模型，了解泌尿系統的組成和其各器官的位置、形態、結構。【實驗內容】

1、觀察消化系統各器官的位置、形態和大體解剖結構；

2、觀察胃、小腸和肝小葉組織切片；

3、觀察呼吸系統各器官的位置、形態和大體解剖結構；

4、觀察器官和肺組織切片；

5、觀察循環系統各器官的位置、形態和大體解剖結構；

6、觀察泌尿系統各器官的位置、形態和大體解剖結構；

7、觀腎臟組織切片。【實驗學時】4學時

【實驗方法】演示法、觀察法

【實驗材料與器具】消化系統和呼吸系統組成模型，顯微鏡，肺組織切片，消化系統和呼吸系統組成模型，腎臟組織切片 【實驗作業】

1、簡述消化系統的基本組成。

2、繪制肺顯微結構簡圖。

3、簡述循環系統的基本組成。

4、繪制腎臟顯微結構簡圖。

實驗四 感覺器官

【實驗目的】

1、了解眼的解剖結構；

2、了解耳的大體解剖結構。【實驗內容】

1、觀察視器的構造；

2、觀察耳的形態結構。【實驗學時】4學時

【實驗方法】演示法、觀察法 【實驗材料與器具】眼和耳模型 【實驗作業】

1、簡述眼的折光系統；

2、耳蝸中有那些感受器，并簡述其功能。

實驗五 神經系統

【實驗目的】

1、了解中樞神經系統的基本組成；

2、掌握大腦、小腦、間腦、腦干的基本形態結構；

3、掌握脊髓的基本特征及其內部結構；

4、了解外周神經的分布；

5、掌握錐體傳導路和內側丘系的基本結構。

【實驗內容】

1、觀察大腦，小腦、間腦、腦干的形態結構；

2、觀察脊髓形態結構；

3、觀察脊髓的顯微結構；

4、觀察12對腦神經的分布情況及其功能；

5、觀察脊神經前支的分布及其功能；

6、觀察自主神經的分布；

7、觀察錐體傳導路和丘系傳導路。【實驗學時】4學時

【實驗方法】演示法、觀察法

【實驗材料與器具】腦和脊髓模型，顯微鏡，脊髓切片，腦神經和脊神經分布模型、自主神經分布模型，傳導路模型 【實驗作業】

1、腦干上有那幾對腦神經？

2、簡述脊髓的形態特征。

3、簡述骶叢中主要神經的分布。

4、簡述一般感覺傳導通路。

第四篇：《微生物生理學實驗》教學改革總結

《微生物生理學實驗》教學改革總結

微生物生理學是微生物學的分支學科之一,主要研究微生物的形態與發生、結構與功能、生長與繁殖、代謝與調等的作用機理節。本課程主要從微生物生理學角度闡述微生物的生命活動規律，系統地介紹了微生物學的基礎理論、基本方法及進行情況，融新理論、新技術、新方法為一體，利求反映微生物學最新發展動態及趨勢。學生學習該課程，不但可為后續課程的學習作好準備，也可為畢業后在農林業工作實踐中不斷提高業務能力提供必要的基礎。

教學目的：(1)使學生對微生物生命活動基本規律有比較全面、系統的認識，牢固掌握微生物生理學的基本概念、知識和原理；(2)學會微生物生理學的基本實驗方法，并在科學態度、實驗技能、獨立科研能力等方面獲得初步的訓練；(3)運用所學的基本理論、知識和技能，分析和解決農業生產實踐中有關微生物生理學的一般問題。

改革實驗成果：

本著注重實驗與理論課的教學與實踐的結合的方針，引導學生將理論知識學以致用的原則，對原有的實驗內容的教學大綱重新修訂。針對16學時的課時要求，選取了“CTAB NaCl法細菌基因組DNA提取”、“ 大腸桿菌蛋白質提取及蛋白質電泳”、“大腸桿菌β-半乳糖苷酶的誘導合成實驗”和“酵母菌原始形態觀察、細胞壁破碎及其形態觀察”四個大實驗作為本課程的主要內容。

(1)CTAB NaCl法細菌基因組DNA提取

通過本實驗，讓學生能夠以提取細菌DNA為目的，從原核微生物的細胞壁破碎入手，理解原核微生物細胞壁的結構與組成，使用溶菌酶、堿性物質達到降解細菌肽聚糖等細胞壁物質的目的，進一步使用苯酚-氯仿試劑去除蛋白質，使學生理解如何分離蛋白質與DNA，最后通過借助乙醇沉淀DNA的原理最終獲取純化的DNA。通過實驗，使學生不僅理解原核微生物的細胞壁、細胞質和細胞核等結構組成，通過各種試劑去除不同物質，達到讓學生充分理解其有關的微生物生理學知識。

學生實驗報告中的結果：

(2)大腸桿菌蛋白質提取及蛋白質電泳 通過本實驗使學生從蛋白質角度，理解微生物中一種重要大分子復合物的提取及其有關的檢測方法。鍛煉學生基本動手能力，因為在學生進行畢業實習、科創研究中，提取蛋白質的實驗是必不可少的，通過該實驗的實施，可以使得學生真正熟悉有關蛋白質的初步分離純化以及鑒定的有關實驗步驟及其原理，再有可以幫助學生熟悉超聲波破碎儀的使用方法、SDS-PAGE的凝膠制備與蛋白電泳等知識。

學生實驗報告中的結果：

(3)大腸桿菌β-半乳糖苷酶的誘導合成

通過本實驗的開設，著重讓學生掌握“酶學鑒定方法”、“酶活調控”等有關微生物生理學知識以及“乳糖操縱子”和“葡萄糖效應”等經典的分子遺傳學知識。了解到乳糖是如何調控β-半乳糖苷酶的合成，以及為什么葡萄糖對該酶合成抑制的知識。啟發學生對微生物生理學與微生物遺傳學知識的實踐應用，增進學生對本課程實驗及其理論課學習興趣。

學生實驗報告中的結果：

(4)酵母菌原始形態觀察、細胞壁破碎及其形態觀察 通過本實驗的開設，使學生在了解原核微生物的細胞結構的基礎上，進一步了解真核微生物的細胞結構與組成。通過蝸牛酶降解酵母菌的細胞壁，讓學生體會到真核微生物細胞壁是由葡聚糖等物質組成，進一步通過顯微鏡的觀察，理解真核微生物細胞在沒有細胞壁保護的情況下變為圓形，更深入地理解細胞壁的保護細胞以及維持細胞正常生理結構的作用。

學生實驗報告中的結果：

第五篇：動物生理學實驗期末復習總結

實驗一 坐骨神經-腓腸肌標本的制備

實驗原理：

蛙類的一些基本生命活動和生理功能與哺乳動物有相似之處，且其離體組織器官的生活條件較為簡單，易于掌握，因此在生理學實驗中常用蛙類的坐骨神經－腓腸肌標本來觀察神經肌肉的興奮性和肌肉收縮特點。

雙毀髓成功的標志：徹底搗毀脊髓時，可看到動物的后肢突然蹬直，而后癱軟如棉，此時的動物為雙毀髓動物。如動物仍表現四肢肌肉緊張或活動自如，必須重新毀髓

任氏液是0.65%的生理鹽水。

制備完整的坐骨神經-腓腸肌標本應包括：連有坐骨神經的脊椎、坐骨神經、腓腸肌、股骨頭或脛腓骨頭四部分。

直流電刺激可興奮細胞時之所以使細胞產生興奮，從根本上講是電刺激改變了細胞原來膜內外之間的電位差。細胞的靜息膜電位為外正內負，如果刺激使膜電位差值減小，即去極化，細胞則興奮；如果使膜電位差值增大（超級化），細胞則興奮性降低（抑制）。因此在細胞膜外使用直流電刺激細胞，通電時興奮只發生在負極，正極的興奮性下降，在持續通電期間不形成刺激；斷電時產生反向電流，興奮只發生在正極；通電的刺激強度大于斷電。

實驗步驟：

1、破壞腦和脊髓 將頭部抬起，在離吻端約1.5cm 處的背部皮膚會形成V 形皺褶，V 形皺褶中心的皮膚下方為枕骨大孔。

2、剪去軀干上部及內臟，分離后肢。

3、剝皮。

4、分離兩腿。

5、分離坐骨神經。

從肱二頭肌和半膜肌中間分離坐骨神經，剪斷細小神經。

6、分離腓腸肌。

7、分離股骨。

刮凈股骨上的肌肉，在距膝關節約1cm處剪斷股骨。

8、分離膝關節以下部分。

9、檢查標本興奮性。

用手術鑷輕輕提起標本的脊椎片，使神經離開玻璃板。再用經任氏液蘸濕的鋅銅弓，將其兩級接觸神經，如腓腸肌發生迅速收縮，則表示標本機能正常。

注意事項：

1、雙毀髓時應注意使蟾蜍頭部前俯，防止耳后腺分泌物射入實驗者眼內，如被射入，應立即用清水沖洗眼睛。

2、盡量減少神經與金屬器械及污染物接觸。（？）金屬因為有電子的移動會刺激神經。

3、避免過度牽拉和壓迫神經。

4、分離神經時一定要將周圍組織剝離干凈。

5、要常用任氏液浸潤標本，防止干燥，勿用清水沖洗。

6、分離肌肉時要按層進行，不要亂剪。

思考題：

為何鋅銅弓刺激神經會引起肌肉收縮？

鋅銅弓在溶液中沾濕以后，鋅的表面電離出正離子，里面形成負離子；而銅的表明電離出負離子，里面形成正離子。當鋅銅弓接觸活組織時，電流便沿著鋅片→活組織→銅片的方向流動而產生刺激效應。所以鋅相當于正極，而銅相當于負極發揮刺激作用。當斷開時，則發生相反的效應。

實驗二 刺激強度與收縮反應的關系；骨骼肌的單收縮與強直收縮

實驗目的：

1、學習神經-肌肉實驗的電刺激方法

2、觀察刺激強度與肌肉收縮反應的關系

3、記錄單收縮與強直收縮

基本原理非常重要！！

閾強度/閾值/閾刺激：引起肌肉收縮反應所需的最小刺激強度。閾下刺激：刺激強度小于閾值的刺激，不引起肌肉發生收縮反應。閾上刺激：刺激強度大于閾值的刺激。

最適刺激：引起肌肉發生最大收縮反應的最小刺激強度。（名詞解釋！！）

單收縮：肌肉組織對于一個閾上強度的刺激，發生一次迅速的收縮反應。一般經過潛伏期、收縮期和舒張期三個時期。

從刺激開始到收縮開始這一段無明顯外部表現的時間,即為潛伏期。這是興奮的產生、傳導和傳遞以及興奮-收縮耦聯所耗費的時間。

由潛伏期末到肌肉開始收縮到收縮達到高峰，是肌肉長度縮短或張力增加的時間，曲線較陡，稱為收縮期。

從收縮高峰開始，曲線較緩慢地下降至基線，是長度或張力恢復過程，稱為舒張期。

受到連續單刺激時，肌肉能夠發生強直收縮。不完全強直收縮：后一收縮發生在前一收縮的舒張期。

完全強直收縮：后一收縮發生在前一收縮的收縮期內，各收縮不能分開，肌肉維持穩定的收縮狀態。

如果刺激間隔大于單收縮的時程，肌肉則出現兩個分離的單收縮；如果刺激間隔小于單收縮的過程而大于不應期，則出現兩個收縮反應的重疊，即收縮的總和；但如果第二個刺激在第一個收縮反應的不應期內，則第二個刺激不產生收縮反應。

實驗步驟：

1、坐骨神經－腓腸肌標本的制備；

2、將標本置于屏蔽盒內，坐骨神經放在刺激電極上，結扎肌腱的棉線與張力換能器相連，此連線不宜太緊或太松，并應與桌面垂直。

3、連接裝置和計算機采集系統；

4、刺激觀察。

①刺激強度對肌肉收縮幅度的影響

1）刺激方式用單刺激,刺激強度初始值設為0.01-0.05V，增量0.005V，然后采樣；

2）將刺激強度逐步增大，記錄閾刺激和最適刺激強度數值。②刺激頻率對肌肉收縮形式的影響

1）選用單刺激，用剛能引起最大收縮的刺激強度采樣，刺激間隔時間大于肌肉收縮時程，記錄肌肉的單收縮張力曲線；

2）逐漸增加刺激頻率，觀察肌肉收縮形式的變化，記錄出現不完全強直收縮和完全強直收縮時的刺激頻率。

注意事項：

1．分離坐骨神經時，避免過度牽拉神經，絕對不允許用手或鑷子夾神經。2．股骨要牢固地固定在肌槽的小孔中。

3．坐骨神經要與刺激電極和記錄電極緊密接觸，但不要損傷神經。4．防止神經、肌肉標本干燥，需經常在神經和肌肉上以任氏液潤濕。

5．長時間刺激標本可能使骨骼肌的收縮能力下降，因此每個步驟后應讓肌肉休息片刻。6．把腓腸肌懸掛在換能器上的棉線應松緊適中，不要過長，并和換能器平面保持垂直。7．實驗的采樣速度較快，為避免過度消耗硬盤和內存，不要長時間記錄。

實驗三 神經干動作電位的引導；神經干傳導速度的測定；神經興奮不應期的測定

實驗目的：

分離蟾蜍的坐骨神經，細胞外記錄坐骨神經干的單相和雙相復合動作電位； 測定動作電位在神經干上的傳導速度 神經興奮不應期的觀察

神經細胞（纖維）在受到有效刺激（閾刺激，閾上刺激）后，產生了動作電位，即興奮，它是“全或無”的；

神經干由許多興奮性不同的神經纖維組成，故神經干動作電位與單根神經纖維的動作電位不同，它是由許多神經纖維動作電位綜合成的復合性的電位變化，其電位幅度在一定范圍內可隨刺激強度的變化而變化。

（神經纖維是“全或無”的但神經干不是，因為神經干是有很多的神經纖維組成的）

神經干在受到有效刺激后可以產生復合動作電位，標志著神經發生興奮。

神經每興奮一次及其在興奮以后的恢復過程中，其興奮性都要經歷一次周期性的變化，其全過程依次包括絕對不應期、相對不應期、超常期和低常期4個時期。

為了測定神經發生一次興奮以后興奮性的變化，首先給神經施加一個條件性刺激（S1）引起神經興奮，然后在前一興奮及其恢復過程的不同時期再施加一個測試性刺激（S2），檢查神經的興奮閾值以及所引起的動作電位的幅值，以判定神經興奮性的變化。

如果兩引導電極置于正常完整的神經干表面，當神經干一端興奮后，興奮波先后通過兩個引導電極處，可以記錄到兩個方向相反的電位偏轉波形，稱為雙相動作電位。

如果兩引導電極之間的神經組織有損傷，興奮波只通過第一個引導電極，不能傳導至第二個引導電極，則只能記錄到一個方向的電位偏轉波形，稱為單相動作電位。

動作電位在神經纖維上的傳導有一定的速度。不同類型的神經纖維，其傳導速度各不相同，取決于其直徑、環境溫度等。

測定神經沖動在神經干上的傳導距離（d）與通過這些距離所需的時間（t），即可根據 V = d / t 求出神經沖動的傳導速度（m/s）。刺激偽跡(Stimulus artifact): 是刺激電流通過導電介質擴散至兩引導電極而形成的電位差信號。

測量刺激偽跡到兩個動作電位起始點的時間，求出t2t1）。

在同樣的刺激強度下，縮短兩個刺激的時間間隔。當第二個刺激引起的動作電位幅度開始降低時，說明第二個刺激落入第一次興奮的相對不應期，此時兩刺激的間隔時間為t1。繼續縮短兩刺激的時間間隔，當第二個動作電位完全消失，表明此時第二個刺激開始落入第一次興奮后的絕對不應期，此時兩刺激的間隔時間為t2，即為該神經干的絕對不應期；t1減去t2的差值，則為該神經干的相對不應期。

實驗步驟：

1、制備蟾蜍坐骨神經干標本

2、連接實驗裝置

①記錄隨刺激強度增強而改變的雙相復合動作電位（閾強度、最適刺激強度）②測量動作電位的傳導速度

③不應期觀察，用剛能使神經干產生最大動作電位的刺激強度 ④觀察單相動作電位 實驗四 反射時的測定；反射弧的分析

實驗目的：

學習測定反射時的方法，了解刺激強度與反射時的關系；

了解反射弧的組成通過某些脊髓軀體運動反射，證實反射弧完整性與反射活動的關系。

在中樞神經系統的參與下，機體對刺激所產生的具有適應意義的反應過程稱為反射。反射活動的結構基礎是反射弧。典型的反射弧由感受器、傳入神經、神經中樞、傳出神經和效應器五部分組成。

從刺激作用于感受器至效應器出現反應所經歷的時間稱反射時。

由于脊髓的機能比較簡單，所以常選用只毀腦的動物（如脊蛙或脊蟾蜍）為實驗材料，以利于觀察和分析。（脊蟾蜍-半毀髓）

實驗步驟：

標本制備：用左手拇指和食指，從蛙背側捏住腹部脊柱，右手用剪刀伸入蛙口中，在鼓膜的后面剪去頭部，即為脊蟾蜍。

用蛙嘴夾夾住蟾蜍下頜，懸掛于支架上。

實驗項目：

1、反射時的測定：將蟾蜍一側后肢的最長趾趾尖浸入盛有0.1%硫酸溶液的平皿內(深入的范圍一致),立即記下時間（秒），當出現屈反射時，停止計時，此為屈反射時。重復測定3次。再以0.3%、0.5%硫酸溶液測定同一側后肢最長趾的反射時。

2、搔扒反射：取一浸有1%硫酸溶液的濾紙片，貼于蟾蜍右側背部或腹部，記錄反射時。

3、破壞皮膚感受器：左后肢趾關節上作一環形皮膚切口，將切口以下的皮膚全部剝除(剝除干凈！)，1%硫酸溶液浸泡該趾尖，觀察該側后肢的反應。以上各步反應后，清水洗掉濾紙片和硫酸，紗布擦干。

4、阻斷坐骨神經：將動物俯臥位固定在蛙板上，于右側大腿背部縱行剪開皮膚，在股二頭肌和半膜肌之間的溝內找到坐骨神經干，在神經干下穿一條細線備用，并在神經干下放一小塊浸蠟紙片。再將動物懸掛在支架上。提起穿在右側坐骨神經下的細線，用浸泡過2%普魯卡因麻醉劑的棉條壓在神經干下面（在浸蠟紙片上，以免麻醉劑滲透至周圍組織）。每隔15秒，用硫酸刺激右側趾端皮膚，記錄加藥至屈反射消失的時間。

5、破壞中樞：搗毀脊髓，硫酸刺激觀察有無屈肌反射。

注意事項：

制備脊蛙時，顱腦離斷的部位要適當，太高因保留部分腦組織而可能出現自主活動，太低又可能影響反射的產生。

用硫酸溶液或浸有硫酸的紙片處理蛙的皮膚后，應迅速用自來水清洗，以清除皮膚上殘存的硫酸，并用紗布擦干，以保護皮膚并防止沖淡硫酸溶液。

浸入硫酸溶液的部位應限于一個趾尖，每次浸泡范圍也應一致,切勿浸入太多。

實驗五 視野的測定；毀鴿一側半規管效應 視野測定

單眼固定地注視前方一點時，該眼所能看到的空間范圍，稱為視野。由于受面部結構和各類感光細胞在視網膜中的分布情況的影響，在同一光照條件下，正常人的視野鼻側和上方視野較小，顳側與下方視野較大。

實驗步驟：

(1)弧架水平。受試者下頜放在托頜架上，眼眶下緣靠在眼眶托上，調節高低，使眼與弧架中心點在同一水平線上。遮住一眼，另一眼注視弧架的中心點。檢查者持白色視標，沿弧架內面從外周邊向中央慢慢移動，看到時記下度數；再將白色視標從中央向外周邊移動，當看不到時再記下度數。求兩次度數的平均值，并在視野圖紙相應的方位和度數上點出。

(2)將弧架轉動45度角，重復上述操作，共4次，得出8個點。將視野圖紙上的這8個點依次連接起來，就得出大致的白色視野圖。

(3)按上述方法分別測出該側的紅色、綠色視野。

注意事項：

1、實驗時受試者最好背對光源，且上下左右光照亮度要一致。

2、測定視野過程中，受試者被測眼應始終凝視弧架中心點，眼球不能移動。

3、測試時，視標移動速度要慢。

4、實驗過程中可讓受試者稍作休息，以免眼睛疲勞而影響結果。

家鴿一側半規管損毀效應

實驗目的：通過觀察毀壞鴿一側半規管后行為的改變，掌握半規管的功能。

實驗步驟：

1、將鴿子用紗布包好

2、剪去頭部羽毛，在頂部切開皮膚，用手術刀將皮膚分向兩側，可見兩塊肌肉附著于顱骨上。

3、用手術刀小心從肌肉附著處緊貼顱骨將肌肉往下刮（不應將肌肉切斷），暴露其下的顱骨。

4、小心將骨膜刮干凈，用棉花吸去滲出的血液，在顱骨下隱約可見半規管。用刺蛙針穿過顱骨小心將半規管刺破（不要刺得太深，以免損傷其它的腦組織）。

5、將頭皮縫合，待動物清醒后，觀察其在靜止時的姿勢以及行走和飛翔時的狀態，注意與正常各自加以比較。如果將鴿子的眼睛蒙上，現象會更明顯。（手術中盡量避免出血。如果出血，可用棉花或止血海綿壓迫止血）

半規管的作用是維持姿勢和平衡，當毀壞鴿子左側的半規管后，鴿子會逆時針方向向左歪斜行走，當飛行時會逆時針方向飛行，并且身體朝左歪。

實驗六 血紅蛋白含量測定；心音聽診；人體動脈血壓測定

血紅蛋白含量測定

正常參考值（在我國平原地帶）

成年男性：120～160g/L

成年女性：110～150g/L

新生兒：

170～200g/L

兒童：

110～160g/L 一般成年男性血紅蛋白＜120g/L，成年女性血紅蛋白＜110g/L則為貧血。

掌握比色法測定血紅蛋白含量的方法。

血紅蛋白本身的色澤，常隨所結合氧量的多少而變化，不宜比色。但在一定量的血液中，血紅蛋白經少量鹽酸作用，使亞鐵血紅蛋白氧化為高鐵血紅蛋白，失去結合氧的能力，呈現較穩定的棕色。用水稀釋后與標準色比較，從而測定出血紅蛋白的含量。

血紅蛋白計包括：標準比色架、血紅蛋白稀釋管和血紅蛋白吸管。此外還有攪拌用的玻璃棒和添加蒸餾水的滴管。（5個東西！）

實驗步驟：

1、用滴管將0.1mol/L鹽酸加入血紅蛋白稀釋管中至刻度“10％”或“2”處。

2、用血紅蛋白吸管吸血至刻度20mm3處(0.02mL)，拭凈外壁，將血液立即吹入血紅蛋白稀釋管的鹽酸中。反復吸吹，使血紅蛋白吸管中血液全部進入鹽酸液中(避免起氣泡)。混勻,靜置10min。

3、將血紅蛋白稀釋管插入標準比色架兩色柱中央的空格中，使無刻度的兩側面位于空格的前后方，便于透光和比色。

4、用滴管逐滴加入蒸餾水使液體顏色變淺，邊加邊混勻并與標準比色板比較，至二者顏色相同止。

5、讀出測定管內液體凹面最低處所在克數，即為每100mL血液中含血紅蛋白的克數。另一面刻度表示百分率，可參照血紅蛋白計的說明換成克數以核對讀數。

注意事項：

1、滴加蒸餾水時，宜逐滴加入，攪拌均勻。

2、比色應在自然光下進行，避免在陰暗或有色燈光下比色。

人的心音聽診

實驗目的：學習心音聽診的方法，識別第一心音與第二心音。心音是由心臟瓣膜關閉和心肌收縮引起的振動所產生的聲音。用聽診器在胸壁前聽診，在每一心動周期內一般可以聽到兩個心音。

第一心音：音調較低（音頻為25～40次/s），而歷時較長（0.142s），是由房室瓣關閉和心室肌收縮振動所產生的。由于房室瓣的關閉與心室收縮開始幾乎同時發生，因此第一心音是心室收縮的標志，其響度和性質變化，常可反映心室肌收縮強、弱和房室瓣膜的機能狀態。

第二心音：音調較高（音頻為50次/s）而歷時較短（0.08s），較清脆，主要是由半月瓣關閉產生振動造成的。由于半月瓣關閉與心室舒張開始幾乎同時發生，因此，第二心音是心室舒張的標志，其響度常可反映動脈壓的高低。

實驗步驟：

1．受試者安靜端坐，胸部裸露。

2．檢查者帶好聽診器，注意聽診器的耳具應與外耳道開口方向一致（向前）。以右手的食指、拇指和中指輕持聽診器胸端緊貼于受試者胸部皮膚上，依次由左房室瓣聽診區→主動脈瓣聽診區→肺動脈瓣聽診區→右房室瓣聽診區，仔細聽取心音，注意區分兩心音。

人體動脈血壓的測定及其影響因素

測定人體動脈血壓最常用的方法是間接測壓法，是使用血壓計在動脈外加壓，根據血管音的變化來測量動脈血壓的。血管音：

當外壓大于收縮壓時：血管被壓閉，無血流，無血管音； 當外壓小于收縮壓而大于舒張壓時：血管時斷時續，出現血管音； 當外壓小于舒張壓時：血流通暢，無血管音。

正常人的血壓

收縮壓：90毫米～140毫米汞柱。舒張壓：60毫米～90毫米汞柱。

血壓隨年齡的增大而上升，老年人血壓比正常人血壓偏高。

實驗步驟：

1．受試者脫左臂衣袖，靜坐5min。

2．松開打氣球上的螺絲，將壓脈帶內的空氣完全放出，再將螺絲扭緊。

3．將壓脈帶裹于左上臂，其下緣應在肘關節上方約3cm處，松緊應適宜。受試者手掌向上平放于臺上，壓脈帶應與心臟同一水平。4．在肘窩部找到動脈搏動處，左手持聽診器的胸具置于其上。注意：不可用力下壓。5．聽取血管音變化。右手持打氣球，向壓脈帶打氣加壓，此時注意傾聽聲音變化，在聲音消失后再加壓20mmHg，然后扭松打氣球螺絲，緩慢放氣（切勿過快），此時可聽到血管音的一系列變化，聲音從無到有，由低而高，而后突然變低，最后完全消失。然后扭緊打氣球螺絲繼續打氣加壓，反復聽取聲音變化2~3次。

6．測量動脈血壓重復上一操作，同時注意檢壓計之水銀柱和聲音變化。在徐徐放氣減壓時，第一次聽到血管音的水銀柱高度即代表收縮壓。在血管音突然由強變弱時的水銀柱高度即代表舒張壓，記下測定數值后，將壓脈帶內的空氣放盡，使壓力降至零。測2~3次，每次間隔2~3min。

注意事項：

1．測壓時室內須保持安靜，以利聽診。

2．戴聽診器時，務使耳具的彎曲方向與外耳道一致，即接耳的彎曲端向前。3．壓脈帶裹繞要松緊適宜，并與心臟同一水平。

4．重復測壓時，須將壓脈帶內空氣放盡，使壓力降至零位，而后再加壓測量。5.切勿將聽診器放入袖帶內。

6.開始打氣時打開水銀柱根部的開關，使用完畢后應關上開關，以免水銀溢漏。

實驗七 離體蛙心灌流

學習離體蛙心灌流法；

觀察鈉離子、鉀離子、鈣離子及腎上腺素、乙酰膽堿等對離體心臟活動的影響。心肌具有自動節律性收縮的特性，故離體的蛙心在一定時間內仍能產生節律性收縮。離體心臟的自動節律性活動依賴于內環境的相對穩定，所以改變灌流的成分，即可引起心臟活動的改變。

心肌的舒縮活動是由Ca2+觸發的，而心肌細胞舒縮活動所需的鈣主要依賴于細胞外液。

5%NaCl溶液：

[Na+]o↑→Na+內流↑→ Na+-Ca2+交換↑ → [Ca2+]i↓

→興奮—收縮耦聯↓ →收縮力↓。

2%CaCl2溶液：

[Ca2+]o ↑ → Ca2+內流↑ → [Ca2+]i↑ →興奮—收縮耦聯↑

→收縮力↑。

舒張期Ca2+與肌鈣蛋白不完全解離，舒張不完全，表現為基線上移產生Ca2+強直。

1%KCl溶液

[K+]o ↑ → Ca2+內流↓→ 收縮力↓。

K+與Ca2+在心肌細胞膜上有競爭性抑制作用。

心臟的起搏點是靜脈竇。

實驗步驟：

一、離體蟾蜍心臟制備

1.取蟾蜍一只，破壞腦和脊髓；

2.打開胸腔，暴露心臟。

3.蛙心插管

? 右主動脈結扎。

? 在左主動脈下穿一線打一松結；在左主動脈下再穿一線,在距離主動脈干0.5cm處結扎。

? 在左主動脈近根部剪口，將蛙心插管（盛有2~3cm高度的任氏液，內加入1滴肝素溶液）插入心室內。

? 插管插入心室標志: 見血液涌入插管內，并隨心跳上下波動。4.將松結線扎緊，并固定在插管的側管上。

5.輕輕提起套管和心臟，看清靜脈竇的位置，于靜脈竇下方剪斷有牽連的組織，僅保留靜脈竇與心臟的聯系，使心臟離體（切勿損傷靜脈竇）。

6.用任氏液反復換洗心室內余血，直至蛙心套管內無血液殘留。保持套管內液面高度1.5~2cm即可進行實驗。

二、連接實驗裝置

1.用試管夾將蛙心套管固定在鐵架臺上；

2.將與張力換能器有連線的蛙心夾在心室舒張期夾在心尖肌肉上。張力換能器固定在鐵架臺上，調節線的松緊并使其垂直。

3.張力換能器與計算機生理機能實驗系統的通道1輸入端口相連。

三、觀察項目

1、描記正常心搏曲線

2、離子和藥物的影響

注意事項：

換液時切勿碰套管，以免影響紀錄曲線的基線，同時保持灌流液面的一致。插套管時要特別小心，應逐漸試探插入，以免損傷心肌。隨時滴加任氏液于心臟表面使之保持濕潤；

如果其深度和位置合適，則套管中的液面隨心臟的跳動而上升和下降。須待心跳恢復正常后，才能進行下一實驗項目。

實驗八 腎上腺摘除小鼠的觀察

實驗目的：學習和研究摘除小白鼠腎上腺造成內分泌功能缺損對機體水鹽代謝及應激反應的影響。

腎上腺分為皮質和髓質兩部分。皮質分泌的激素為維持機體生命和正常的物質代謝所必需。腎上腺皮質釋放鹽皮質激素、糖皮質激素和少量性激素。髓質分泌的激素與交感神經功能類似，摘除后并不影響生命。糖皮質激素參與體內糖、蛋白質和脂肪的代謝調節，并能增強機體對有害刺激的耐受能力；鹽皮質激素則參與水鹽代謝的調節。故摘除兩側腎上腺后，皮質功能失調現象迅速出現，表現出食欲下降、低血壓、肌無力和腎衰竭等，同時也表現出抗炎癥、抗過敏能力下降及對有害刺激的耐受力下降。實驗步驟：

1、小鼠用浸有乙醚的棉球將其麻醉，勿麻醉過深；

2、俯臥固定于解剖臺上；

3、最后肋骨至骨盆區之間背部剪去被毛，用酒精擦拭；

4、從最后胸椎處向后沿背部正中線切開皮膚1.0～2.0 cm，在一側背最長肌外緣分離肌肉，剪開腹腔，擴創，略將肝臟前推，暴露脂肪囊，找到暗紅色腎臟，在腎臟的前方即可找到由脂肪組織包埋的粉色半個大米粒大小的腎上腺，用小鑷子輕輕摘除腎上腺（與腎臟之間的血管和組織可用鑷子夾住片刻）。然后將皮膚切口向另一側牽拉，用同樣的方法摘除另一側腎上腺。最后縫合肌層和皮膚，縫合后用酒精擦拭消毒。注意：勿傷腹腔膜及臟器。

5、最后縫合肌層和皮膚。

6、實驗觀察： 應激反應：游泳。

按組將實驗、對照組投入冰水，比較各組動物的游泳姿勢與速度。動物下沉后立即撈出，待其恢復放籠中觀察飲水。飲水和鹽水量。

鹽皮質激素的主要生理作用是促進腎小管重吸收鈉而保留水，并排泄鉀。它與下丘腦分泌的抗利尿激素相互協調，共同維持體內水、電解質的平衡。所以摘除腎上腺后小鼠腎小管重吸收鈉會減少，理論上應該是飲鹽水更多。

實驗九 家兔動脈血壓的神經、體液調節

高等動物的動脈血壓相對穩定，通過神經、體液因素的調節而實現。神經系統的調節主要通過各種心血管系統的反射而實現，其中最重要的是頸動脈竇—主動脈弓反射即減壓反射。心臟受交感神經和副交感神經支配，支配心臟的副交感神經為迷走神經。體液調節主要通過腎上腺素和去甲腎上腺素，這些藥物能通過與心肌和血管平滑肌上的相應受體結合而發揮作用。

心臟受交感神經和副交感神經（迷走神經）的雙重支配。交感神經興奮通過其末梢釋放的去甲腎上腺素（norepinepherine，NE）與心肌細胞膜上的b1受體結合，引起心率加快、心肌收縮力增強，心輸出量增加，血壓升高。迷走神經興奮通過其末梢釋放的乙酰膽堿（Acetylcholine，Ach）與心肌細胞膜上的M受體結合，引起心率減慢、心房肌收縮力減弱，心輸出量減少，血壓降低。

夾閉一側頸總動脈后，血壓升高，其機制是：阻斷頸總動脈血流，導致頸動脈竇血壓下降，頸動脈竇壓力感受器沖動減少，經竇神經上傳中樞的沖動減少，降壓反射活動減弱，心血管中樞活動發生改變，表現為心迷走中樞抑制，心交感中樞興奮和交感縮血管中樞興奮，從而迷走神經傳出沖動減少，而交感神經傳出沖動增多，引起心跳加快、加強，心輸出量增多，小動脈收縮，外周阻力增大，結果導致血壓升高。

兩側心迷走神經對心臟不同部位的支配有所側重。一般說，右迷走神經對竇房結的影響占優勢，因而對心率影響較大；左迷走神經對房室交界的作用占優勢，所以對房室傳導的影響較大。在實驗中，刺激兔右側迷走神經外周端，心臟活動受抑制，心搏減慢甚至停止，心輸出量減少，血壓迅速下降。如長時間刺激迷走神經還可出現“迷走脫逸”現象。其原因可能是由于竇房結活動停止，對心室內起搏點的超速抑制解除，心室內起搏點發放沖動，心臟以較慢節律恢復跳動；或由于血壓下降，降壓反射減弱，心交感神經中樞活動增強；以及長時間迷走神經興奮，加強了心室對交感神經的敏感性，引起心臟復跳。刺激左側心迷走神經外周端也可以使血壓下降，但主要是由于減慢房室間興奮傳到而使心率減慢，進而使血壓下降。故刺激左側迷走神經出現的心率減慢及血壓下降均不如刺激右側時明顯。

兔減壓神經是傳入神經，其作用是將主動脈弓壓力感受器的沖動傳入延髓心血管中樞，反射性引起血壓降低。

迷走神經為傳出神經 刺激迷走神經的外周端會引起血壓降低、心率變慢。

減壓神經為傳入神經 刺激減壓神經的外周端對血壓和心率沒有影響；刺激減壓神經的中樞端會引起血壓降低。

在動物生理實驗中,在相同的刺激頻率下,刺激減壓神經引起血壓降低的時間短于刺激迷走神經引起血壓降低的時間。（因為神經傳導過程中有損失？）

實驗基本程序：

麻醉-氣管插管-頸部神經分離術-動脈插管術-連接實驗裝置-實驗觀察

實驗步驟：

1、家兔稱重，按5 ml/kg體重由耳緣靜脈注射20%氨基甲酸乙酯（藥名烏拉坦）麻醉家兔。家兔麻醉后將其仰臥，固定四肢和頭。

2、頸部手術，頸正中切口5～7cm左右皮膚，用止血鉗鈍性分離，暴露氣管并穿棉線備用。氣管插管，喉頭下2-3cm處切一倒T形口，用玻璃分針分離出一側減壓神經（最細）和迷走神經（最粗）和兩側頸總動脈穿線備用。

3、動脈插管 用備用的絲線結扎左側頸總動脈遠心端，動脈夾夾住近心端，在靠近動脈結扎線的近心端用眼科剪作一45度切口，向心方向插入動脈插管，結扎固定。

4、全身抗凝，注射肝素溶液，使家兔全身肝素化。

（如果漏液——續灌傳導液。先用注射器堵住，再打開開關；用力緩慢、勻力，將血液趕回血管）松開動脈夾：

? 血液僅倒流少許，且分界面搏動——插管成功 ? 不搏動——血液凝固；未插入血管腔 ? 一直倒流——換能器接點漏液 ? 專人照看

5、實驗觀察：

1.觀察正常血壓曲線；

2.夾閉另一側頸總動脈（未插管的一側）； 3.刺激另一側減壓神經；

4.剪斷減壓神經，分別刺激減壓神經中樞端和外周端； 5.刺激另一側迷走神經；

6.剪斷迷走神經，分別刺激迷走神經中樞端和外周端； 7.注射腎上腺素0.2~0.3ml，不能過量； 8.注射乙酰膽堿0.2~0.3ml。

注意事項：

1．一項實驗后，須待血壓基本恢復后再進行下一項實驗。

2．隨時注意動脈套管的位置，特別是動物掙扎時，避免扭轉插管阻塞血流或戳穿血管。3．神經需刺激時才拉出，不要一直由保護電極勾住，防止神經干燥。

實驗十 家兔呼吸運動調節

觀察并分析肺的牽張反射以及影響呼吸運動的各種因素。

正常情況下，呼吸運動保持有節律的活動，當體內外環境條件變化時，由于體內完善的調節機制的作用，呼吸運動將會作出相應的改變以適應改變了的機體代謝的需要。

肺牽張反射是保證呼吸運動節律的機制之一。

實驗步驟：

1、家兔稱重，按5 ml/kg體重由耳緣靜脈注射20%氨基甲酸乙酯麻醉家兔。家兔麻醉后將其仰臥，固定四肢和頭。

2、用剪毛剪剪掉頸部手術部位的兔毛，頸前正中作6～8cm左右皮膚切口，用血管鉗鈍性分離離暴露氣管。分離氣管，并在氣管底下穿一根棉線備用。用手術剪在甲狀軟骨下1cm處剪一“⊥”切口,插入氣管插管，結扎固定。

3、分離兩側迷走神經，穿線備用。

4、切開胸骨下端劍突部位的皮膚，沿腹白線切開長約2cm的切口，打開腹腔，小心分離劍突表面的組織，暴露劍突軟骨和胸骨柄，剪去一段劍突軟骨的骨柄，使劍突變游離。提起劍突，可見劍突隨膈肌的收縮而自由運動。

5、將縛有長線的金屬鉤鉤住劍突中間部分，線的另一端垂直系于張力換能器上，后者與計算機第1通道插孔相連。

6、啟動計算機，進入生物信號采集系統與處理系統的主界面，選擇呼吸實驗的呼吸運動調節項，進行以下實驗觀察并記錄：（1）正常的呼吸運動曲線；

（2）增加無效腔對呼吸運動的影響

將氣管插管的一側開口與長的橡皮管相連，另一側用止血鉗夾閉。觀察并記錄呼吸運動曲線；

（3）肺牽張反射 于吸氣之末，通過氣管插管的一側管注射約20ml空氣，并在推注空氣的同時，夾閉氣管插管的另一側管。觀察呼吸運動有何變化。待呼吸運動恢復后，于呼氣之末，用注射器由肺內抽取氣體，觀察呼吸運動的變化。

（4）剪斷一側迷走神經，觀察呼吸運動的變化。再切斷另一側迷走神經，觀察呼吸運動的變化。

（5）分別刺激一側迷走神經的中樞端和外周端，再觀察呼吸運動的變化。

增加無效腔對呼吸運動的影響

1.由于無效腔的存在，每次吸入的新鮮空氣不能都到達肺泡進入氣體交換。

2.增大無效腔，減少了肺泡通氣量，降低了氣體更新率，導致血中二氧化碳增加、氧分壓下降。

3.氣道加長，使呼吸氣道阻力增大，從而使呼吸加深加快。

迷走神經在呼吸中的作用：

迷走神經中含有肺牽張反射的傳入神經纖維。肺牽張反射中的肺擴張反射（亦稱吸氣抑制反射）的生理作用，在于阻止吸氣過長過深，加速吸氣和呼氣運動的交替，使呼吸頻率增加。當切斷雙側迷走神經后，中斷了肺牽張反射的傳入通路，肺牽張反射的生理作用被消除，因此呈現出慢而深呼吸運動。

麻醉劑總結：實驗四，2%普魯卡因；實驗八，乙醚；實驗九、十，20%氨基甲酸乙酯。

縫合方法類型：

1、連續縫合，在第一針縫合后打結，繼而用該縫線縫合整個創口，結束前的一針，將重線尾拉出留在對側，形成雙線與重線尾打結。

2、單純間斷縫合，操作簡單，應用最多，每縫一針單獨打結，多用在皮膚、皮下組織、肌肉、腱膜的縫合，尤其適用于有感染的創口縫合。

3、連續鎖邊縫合法，操作省時，止血效果好，縫合過程中每次將線交錯，多用于胃腸道斷端的關閉，皮膚移植時的縫合。4、8字縫合，由兩個間斷縫合組成，縫扎牢固省時，如筋膜的縫合。

5、貫穿縫合法，也稱縫扎法或縫合止血法，此法多用于鉗夾的組織較多，單純結扎有困難或線結容易脫落時。

6、內翻縫合法。

7、外翻縫合法。

8、減張縫合法。

9、皮內縫合法。其縫合的好壞與皮下組織縫合的密度、層次對合有關。如切口張力大，皮下縫合對攏欠佳，不應采用此法。此法縫合的優點是對合好，拆線早，愈合疤痕小，美觀。