第一篇：植物的無性繁殖實(shí)驗(yàn)報(bào)告

植物的無性繁殖實(shí)驗(yàn)報(bào)告

--------探究大蒜的無性繁殖

實(shí)驗(yàn)?zāi)康模毫私獯笏獾臒o性繁殖過程

實(shí)驗(yàn)器材：一個(gè)小“花盆”、2瓣大蒜（帶根）、適量泥土、適量水 實(shí)驗(yàn)方法：實(shí)驗(yàn)法+觀察法 實(shí)驗(yàn)步驟：1、2、3、4、5、將大蒜埋進(jìn)“花盆” 加適量水，并等待其發(fā)芽 發(fā)芽后觀察、記錄 撰寫實(shí)驗(yàn)報(bào)告

實(shí)驗(yàn)結(jié)果如下（有圖有真相）：

第一天

第五天

第七天

第三天

實(shí)驗(yàn)結(jié)果：經(jīng)過一周，兩瓣大蒜均成功發(fā)芽，然后越長越高。

無性繁殖的意義：無性繁殖的優(yōu)點(diǎn)是它能夠保持品種優(yōu)良特性，生長快。但其缺點(diǎn)在于其繁殖辦法不如有性繁殖簡單。

第二篇：植物營養(yǎng)學(xué)實(shí)驗(yàn)報(bào)告

實(shí)驗(yàn)：過磷酸鈣中有效磷的測定

實(shí)驗(yàn)學(xué)時(shí)：3 實(shí)驗(yàn)類型：驗(yàn)證性實(shí)驗(yàn) 實(shí)驗(yàn)要求：必修

一、實(shí)驗(yàn)?zāi)康?/p>

過磷酸鈣與重過磷酸鈣均為水溶性磷肥，所含有的能被植物吸收利用的不僅是水溶性的速效磷，也有一部分為不溶于水但能被檸檬酸提取的磷。測定其有效磷的含量對評定肥料品質(zhì)、合理施用磷肥均具有重要意義。通過本實(shí)驗(yàn)的學(xué)習(xí)，使學(xué)生掌握過磷酸鈣中有效磷的測定方法，理解影響過磷酸鈣中有效磷變化的因素。

二、實(shí)驗(yàn)內(nèi)容

（1）用2%檸檬酸浸提過磷酸鈣，制備待測液。（2）用釩鉬黃比色法定量測定，并計(jì)算出過磷酸鈣中的有效磷的含量。

三、實(shí)驗(yàn)原理、方法和手段

用2%檸檬酸浸提過磷酸鈣(或重過磷酸鈣)中的有效磷(其中包括Ca(H2PO4)2·CaHPO4和游離H3PO4)，浸出液中的正磷酸鹽利用釩鉬黃比色法定量測定。

四、實(shí)驗(yàn)組織運(yùn)行要求

本實(shí)驗(yàn)采用集中授課形式；2人為1組，共同完成實(shí)驗(yàn)操作。

五、實(shí)驗(yàn)條件

儀器設(shè)備:分光光度計(jì)、振蕩機(jī)、電子天平、容量瓶、小漏斗、三角瓶、濾紙等。試劑：(1)50mg/LP標(biāo)準(zhǔn)溶液：準(zhǔn)確稱取105℃烘干的磷酸二氫鉀KH2PO4(AR)0.2195g溶于約400ml蒸餾水中，加入25ml 3mol/L H2SO4，定容至1L，即為50mg/L的標(biāo)準(zhǔn)溶液，可長期保存使用。

(2)2%檸檬酸溶液：稱取20g結(jié)晶檸檬酸(H3C6H5O7·H2O，AR)溶于水中，定容至1L即可。

(3)3mol/L H2SO4：量取濃硫酸166.7ml，用蒸餾水稀釋至1L。

(4)釩鉬酸銨顯色劑：稱取12.5g(NH4)6Mo7O24·4H2O(鉬酸銨)溶于約200ml水中。另將0.625gNH4VO3(偏釩酸銨)溶于150ml沸水中，冷卻后加入125ml濃硝酸，再冷至室溫。然后將鉬酸銨溶液緩緩倒入偏釩酸銨的硝酸溶液中，隨倒隨攪拌，最后用水稀釋至500ml。

六、實(shí)驗(yàn)步驟

1．稱取通過100目篩孔的過磷酸鈣樣品0.5～1.0000g于150ml三角瓶中，加入2%檸檬酸溶液50ml，用橡皮塞塞緊瓶口，振蕩30min，立即用干濾紙過濾，最初7—8ml濾液棄去。2．吸取清亮濾液1～5.00ml于50ml容量瓶中，加水至約35ml，準(zhǔn)確加入10ml釩鉬酸銨顯色劑，定容、靜置30分鐘后用490nm波長，1cm光徑比色皿在光電比色計(jì)上進(jìn)行比色(以空白調(diào)節(jié)比色計(jì)吸收值為零點(diǎn))。

3．標(biāo)準(zhǔn)曲線的制備：吸取50mg/L(ppm)的P標(biāo)準(zhǔn)溶液0、2.5、5.0、7.5、12.5、15.0、20分別放入50ml容量瓶中，加水至35ml，準(zhǔn)確加入10ml釩鉬酸銨顯色劑，定容，15～20min后用490nm波長、1cm光徑比色皿在光電比色計(jì)上比色。以吸收率為縱坐標(biāo)，五氧化二磷的濃度(mg/L)為橫坐標(biāo)，繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。

4．結(jié)果計(jì)算：P2O5%=A×顯色體積×分取倍數(shù)/m×10×100×2.291 A：從標(biāo)準(zhǔn)曲線查得待測液中P2O5濃度mg/L； m：樣品質(zhì)量g； 10：將mg/L換算成g； 100：換算為百分含量； 2.291：將P轉(zhuǎn)換為P2O5的系數(shù)。6

6七、思考題

靜置是目的是什么？

八、實(shí)驗(yàn)報(bào)告

根據(jù)貴州大學(xué)實(shí)驗(yàn)報(bào)告的格式按時(shí)完成實(shí)驗(yàn)報(bào)告，特別要分析實(shí)驗(yàn)結(jié)果。

九、其它說明

（1）本方法顯色時(shí)間較短，常溫下15～20min即可顯色完全。但在冬季較低溫度下顯色慢。

（2）根據(jù)比色時(shí)磷含量的多少，選擇合適的比色波長，2～10mg/kgP2O5選用420nm，14～40mg/kgP2O5選用490nm，待測液中鐵含量高而產(chǎn)生黃色干擾時(shí)，通常選用較長的波長如450nm或470nm。本法比色選用的波長范圍為400～490nm，然而值得注意的是波長由400nm增加到490nm時(shí)，靈敏度會降低10倍。

實(shí)驗(yàn)：植物全氮、磷、鉀的測定

實(shí)驗(yàn)學(xué)時(shí)：3 實(shí)驗(yàn)類型：驗(yàn)證性實(shí)驗(yàn) 實(shí)驗(yàn)要求：必修

一、實(shí)驗(yàn)?zāi)康?/p>

在植物必需的常量元素中，氮、磷、鉀的測定更為經(jīng)常和重要。不論在診斷作物氮、磷、鉀的營養(yǎng)水平和土壤供應(yīng)各該元素的豐缺情況時(shí)，或者在確定作物從土壤攝取各元素的數(shù)量和施肥效應(yīng)時(shí)，都經(jīng)常要測定植物全株或某些部位器官中有關(guān)元素的含量。通過本實(shí)驗(yàn)的學(xué)習(xí)，使學(xué)生了解植物中的氮磷鉀的存在形態(tài)與消化的關(guān)系，掌握植物中全氮磷鉀的測定方法，了解測定時(shí)應(yīng)注意的事項(xiàng)。

二、實(shí)驗(yàn)內(nèi)容

（1）植物樣品的消煮—待測液的制備。（2）植物全氮的測定(半微量蒸餾法)。（3）植物全磷的測定(釩鉬黃吸光光度法)。（4）植物全鉀的測定(火焰光度法)。

三、實(shí)驗(yàn)原理、方法和手段

（一）植物樣品的消煮(H2SO4—H2O2法)方法原理植物中的氮磷大多數(shù)以有機(jī)態(tài)存在，鉀以離子態(tài)存在。樣品經(jīng)濃H2SO4和氧化劑H2O2消煮，有機(jī)物被氧化分解，有機(jī)氮和磷轉(zhuǎn)化成銨鹽和磷酸鹽，鉀也全部釋出。消煮液經(jīng)定容后，可用于氮、磷、鉀等元素的定量。

本法采用H2O2加速消煮劑，不僅操作手續(xù)簡單快速，對氮磷鉀的定量沒有干擾，而且具有能滿足一般生產(chǎn)和科研工作所要求的準(zhǔn)確度，但要注意遵照操作規(guī)程的要求操作，防止有機(jī)氮被氧化成N2或氮的氧化物而損失。

（二）植物全氮的測定(半微量蒸餾法)植物樣品經(jīng)開氏消煮、定容后，吸取部分消煮液堿化，使銨鹽轉(zhuǎn)變成氨，經(jīng)蒸餾和擴(kuò)散，用H3BO3吸收，直接用標(biāo)準(zhǔn)酸滴定，以甲基紅—溴甲酚綠混合指示劑指示終點(diǎn)。

（三）植物全磷的測定(釩鉬黃吸光光度法)

植物樣品經(jīng)濃H2SO4消煮使各種形態(tài)的磷轉(zhuǎn)變成磷酸鹽。待測液中的正磷酸與偏釩酸和鉬酸能生成黃色的三元雜多酸，其吸光度與磷濃度成正比，可在波長400～490nm處用吸光光度法測定磷。磷濃度較高時(shí)選用較長的波長，較低時(shí)選用較短的波長。此法的優(yōu)點(diǎn)是操作簡便，可在室溫下顯色，黃色穩(wěn)定。在HNO3，HCl,HClO4和H2SO4等介質(zhì)中都適用，對酸度和顯色劑濃度的要求也不十分嚴(yán)格，干擾物小。在可見光范圍內(nèi)靈敏度較低，適測范圍廣(約為1—20mg/L，P)故廣泛應(yīng)用于含磷較高而且變幅較大的植物和肥料樣品中磷的測定。

（四）植物全鉀的測定(火焰光度法)植物樣品經(jīng)消煮或浸提，并經(jīng)稀釋后，待測液中的K可用火焰光度法測定。

②① 3

四、實(shí)驗(yàn)組織運(yùn)行要求

本實(shí)驗(yàn)采用集中授課形式；2人為1組，共同完成實(shí)驗(yàn)操作。

五、實(shí)驗(yàn)條件

1．儀器設(shè)備：

2．試劑：)硫酸(化學(xué)純、比重1.84)、30%H2O2(分析純)、40%(m/v)NaOH溶液、2%H3BO3—指示劑溶液、標(biāo)準(zhǔn)溶液［C(HCl或1/2H2SO4)=0.01mol/L］、堿性溶液、釩鉬酸銨溶液、6mol/LNaOH溶液、0.2%二硝基酚指示劑、磷標(biāo)準(zhǔn)液［C(P)＝50mg/L］、K標(biāo)準(zhǔn)溶液[C(K)＝100mg/L]。

六、實(shí)驗(yàn)步驟

（一）消煮：稱取植物樣品(0.5mm)0.3～0.5g(稱準(zhǔn)至0.0002g)，放入100ml開氏瓶中，加1ml水潤濕，加入4ml濃H2SO4搖勻，分兩次各加入H2O22ml，每次加入后均搖勻，待激烈反應(yīng)結(jié)束后，置于電爐上加熱消煮，使固體物消失成為溶液，待H2SO4發(fā)白煙，溶液成褐色時(shí)，停止加熱，此過程約需10分鐘。待冷卻至瓶壁不燙手，加入H2O22ml，繼續(xù)加熱消煮約5—10分鐘，冷卻，再加入H2Ｏ2消煮，如此反復(fù)一直至溶液呈無色或清亮后(一般情況下，加H2O2總量約8—10ml)再繼續(xù)加熱5—10分鐘，以除盡剩余的H2O2。取下冷卻后用水將消煮液定量地轉(zhuǎn)移入100ml容量瓶中，定容(v1)。

同時(shí)做空白試驗(yàn)，校正試劑和方法誤差。

（二）全氮的測定

吸取定容后的消煮液5.00—10.00ml，(V2，含NH4—N約1ml)，注入半微量蒸餾器的內(nèi)室，另取150ml三角瓶，內(nèi)加入5ml2%H3BO3—指示劑溶液，放在冷凝管下端，管口置于H3BO3液面以下，然后向蒸餾器內(nèi)室慢慢加入約3ml40%(m/v)NaOH溶液，通入蒸氣蒸餾，(注意開放冷凝水，勿使餾出液的溫度超過40℃)待餾出液體積約達(dá)50～60ml時(shí)，停止蒸餾，用少量已調(diào)節(jié)至pH為4.5的水沖洗冷凝管末端。用酸標(biāo)準(zhǔn)溶液滴定餾出液至由藍(lán)綠色突變?yōu)樽霞t色(終點(diǎn)的顏色應(yīng)和空白測定的終點(diǎn)相同)。用酸標(biāo)準(zhǔn)溶液，同時(shí)進(jìn)行空白液的蒸餾測定，以校正試劑和滴定誤差。

結(jié)果計(jì)算

全N%=C(v-v0)×0.041×100/(m×v2/v1)式中

C—酸標(biāo)準(zhǔn)溶液濃度，mol/L； v—滴定試樣所用的酸標(biāo)準(zhǔn)液，ml； v0—滴定空白所用的酸標(biāo)準(zhǔn)液，ml； 0.041—N的毫摩爾質(zhì)量，g/mmol； m—稱樣量，g；

v1—消煮液定容體積，ml；

v2—吸取測定的消煮液體積ml。

（三）全磷的測定

吸取定容、過濾或澄清后的消煮液10.00ml(V2含磷0.05～0.75mg)放入50ml容量瓶中，加2滴二硝基酚指示劑，滴加6mol/LNaOH中和至剛呈黃色，加入10.00ml釩鉬酸銨試劑，用水定容(V3)。15分鐘后用1cm光徑的比色杯在波長440mm處進(jìn)行測定，以空白溶液(空白試驗(yàn)消煮液按上述步驟顯色)調(diào)節(jié)儀器零點(diǎn)。

標(biāo)準(zhǔn)曲線或直線回歸方程 準(zhǔn)確吸取50mg/LP標(biāo)準(zhǔn)液0，1，2.5，5，7.5，10，15ml分別放入50ml容量瓶中，按上述步驟顯色，即得0，1.0，2.5，5.0，7.5，10，15mg/LP的標(biāo)準(zhǔn)系列溶液，與待測液一起測定，讀取吸光度，然后繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線或求直線回歸方程。

結(jié)果計(jì)算

全P，%＝Ｃ(P)×(v１/m)×(v3/v2)×104

－式中C(P)—從校準(zhǔn)曲線或回歸方程求得的顯色液中磷濃度，mg/L； v3—顯色液體積，ml；

v2—吸取測定的消煮液體積，ml； v1—消煮液定容體積，ml； m—稱樣量，g；

104—將mg/L濃度單位換算為百分含量的換算因數(shù)。－

（四）全鉀的測定

吸取定容后的消煮液5.00—10.00ml(v２)放入50ml容量瓶中，用水定容(v3)。直接在火焰光度計(jì)上測定，讀取檢流計(jì)讀數(shù)。

標(biāo)準(zhǔn)曲線或直線回歸方程 準(zhǔn)確吸取100mg/LＫ標(biāo)準(zhǔn)溶液0，0.5，1.0，2.5，5.0，10，20ml，分別放入50ml容量瓶中，加入定容后的空白消煮液5或10ml(使標(biāo)準(zhǔn)溶液中的離子成分和待測液相近)，加水定容。即得0，1，2，5，10，20，40mg/LK的標(biāo)準(zhǔn)系列溶液。以濃度最高的標(biāo)準(zhǔn)溶液定火焰光度計(jì)檢流計(jì)的滿度(一般只定到90)，然后從稀到濃依次進(jìn)行測定，記錄檢流計(jì)讀數(shù)，以檢流計(jì)讀數(shù)為縱坐標(biāo)繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線或求直線回歸方程。

結(jié)果計(jì)算

全K，%＝Ｃ(Ｋ)×(v3/m)×(v1/v2)×10-4 式中

C(K)—從標(biāo)準(zhǔn)曲線或回歸方程求得的測讀液中K的濃度，mg/L； v1——消煮液定容體積，ml； v2——消煮液的吸取體積，ml； v3——測讀數(shù)定容體積，ml； m——稱樣量，g；

10-4——將mg/L濃度單位換算為百分含量的換算因數(shù)。

第三篇：植物缺素培養(yǎng)實(shí)驗(yàn)報(bào)告

實(shí)驗(yàn)一：玉米的溶液培養(yǎng)及缺素培養(yǎng)實(shí)驗(yàn) 一、實(shí)驗(yàn)?zāi)康?1、掌握種子發(fā)芽和無土栽培的實(shí)驗(yàn)技術(shù)以及配制貯備液的方法，了解氮、磷、鉀等元素對植物生長發(fā)育的影響和學(xué)習(xí)判斷缺素癥狀。

2、了解分光光度計(jì)的使用方法；掌握計(jì)算葉綠體各色素成分含量的方法。

3、學(xué)會 AM-300 手持式葉面積儀測定葉面積的方法

二、實(shí)驗(yàn)原理 1、植物在必需的礦物元素供應(yīng)下正常生長，如缺少某一元素，便會產(chǎn)生相應(yīng)的缺乏癥。用適當(dāng)?shù)臒o機(jī)鹽制成營養(yǎng)液，即能使植物正常生長，稱為溶液培養(yǎng)，如果用缺乏某種元素的缺素液培養(yǎng)，植物就會呈現(xiàn)缺素癥狀而不能正常生長發(fā)育。將所缺元素加入培養(yǎng)液中，該缺素癥狀又可逐漸消失。

2、葉片中葉綠素含量的高低是反映植物葉片光合能力的一個(gè)重要指標(biāo)。另外，葉綠素的含量是植物生長狀態(tài)的一個(gè)反映，一些環(huán)境因素如干旱、鹽漬、低溫、大氣污染、元素缺乏都可以影響葉綠素的含量與組成，并因之影響植物的光合速率。根據(jù)朗伯—比爾定律，某有色溶液的吸光度 A 與其中溶質(zhì)濃度 C 和液層厚度 L 成正比，即 A＝KCL式中：K 比例常數(shù)。當(dāng)溶液濃度以百分濃度為單位，液層厚度為 1cm

時(shí)，K 為該物質(zhì)的吸光系數(shù)。如果溶液中有數(shù)種吸光物質(zhì)，則此混合液在某一波長下的總吸光度等于各組分在相應(yīng)波長下吸光度的總和。這就是吸光度的加和性。

3、葉片性狀特征直接影響到植物的基本行為和功能。葉面積是植物研究中的一個(gè)常用指標(biāo),葉面積的大小決定著植物接收光合有效輻射(photosynthetically active radiation,PAR)的量,與干物質(zhì)產(chǎn)量和地上凈初級生產(chǎn)力有密切關(guān)系,反映了植物對其地理分布和養(yǎng)分條件等外界因素的適應(yīng)策略。同時(shí),葉面積也是影響植物生長、果實(shí)發(fā)育和品質(zhì)的重要生理和形態(tài)指標(biāo)。

三、用品與材料 1、材料：玉米種子； 2、用品：培養(yǎng)缸、試劑瓶、容量瓶、燒杯、移液管、量筒、精密天平、棉花(或海綿)刻度尺、分光光度計(jì)、AM-300 手持式葉面積儀； 3、試劑：硝酸鈣、硝酸鉀、磷酸二氫鉀、磷酸二氫銨、硫酸鎂、氯化鉀、氯化鈣、硫酸錳、乙二胺四乙酸二鈉、硫酸亞鐵、硼酸、硫酸鋅、氯化錳、鉬酸、硫酸銅。

四、實(shí)驗(yàn)步驟 1、育苗。選大小一致飽滿成熟的植物種子，放在培養(yǎng)皿中萌發(fā)，長成 5~7cm 小苗時(shí)，選擇生長勢一致的植株進(jìn)行溶液培養(yǎng)。

2、配制培養(yǎng)液(貯備液)。取分析純的試劑，按實(shí)驗(yàn)表 2-1 用量配制成貯備液。

3、按表 2-2 配制完全液和缺 K 液 4、水培裝置準(zhǔn)備。取 1L 的培養(yǎng)缸，若缸透明，則在其外壁涂以黑漆或用黑紙?zhí)缀茫垢堤幵诤诎淡h(huán)境中，缸蓋上應(yīng)打有數(shù)孔，用海綿或棉花固定植物幼苗。

5、移植與培養(yǎng)。將以上配制的培養(yǎng)液中各加蒸餾水至 1000ml，將幼苗根系洗干凈，小心穿人孔中，用棉花或海綿固定，使根系全浸入培養(yǎng)液中，放在陽光充沛、溫度適宜(20～25℃)的地方。

6、管理、觀察。每三天加蒸餾水一次以補(bǔ)充瓶內(nèi)蒸騰損失的水分。培養(yǎng)液一星期更換一次，最好每天通氣 2～3 次或進(jìn)行連續(xù)微量通氣，以保證根系有充足的氧氣。

7、三周后，進(jìn)行高度、凈重及葉面積的測量，并進(jìn)行記錄。

8、把缺素和完全溶液培養(yǎng)的玉米葉各稱量 0.2g，加入少量 95%酒精研磨成勻漿，最后定容至 10ml。

8、加入比色杯中，使用分光光度計(jì)進(jìn)行吸光值測量。

9、整理并統(tǒng)計(jì)所有數(shù)據(jù)，獲得結(jié)論。

五、實(shí)驗(yàn)結(jié)果 表 表 1 ：缺素培養(yǎng)、完全培養(yǎng)的玉米苗的外部形態(tài)特征

照片

第4天 第8天 第12天

第15天 第19天 第21天

表 表 2 ：缺素培養(yǎng)前后玉米苗生長狀況

完全培養(yǎng)A組 缺素培養(yǎng) A 組 完全培養(yǎng) B 組 缺素培養(yǎng) B 組 培 養(yǎng)前 高(cm)9.80 10.30 10.20 9.50 10.00 10.40 8.00 8.31 8.21 7.80 8.27 8.43 第 3天 高度(cm)21.20 22.10 19.60 19.5 15,5 19.4 17.0 18.8 16.7 17.4 9.0 16.4 第 15天 高度(cm)52.4 37.9 42.4 24．9 34.1 21.1 28.1 50.1 45.9 29.5 33.5 22.8 3 周后 高度(cm)62.1 54.8 54.4 28.0 38.1 23.2 53,7 60.1 58.0 34.0 37.4 24.0 表 表 3 ：第 21 天（第三周）玉米苗各項(xiàng)指標(biāo)

完全培養(yǎng) A 組 缺素培養(yǎng) A 組 完全培養(yǎng) B 組 缺素培養(yǎng) B 組 編號 1 2 3 1 2 3 1 2 3 1 2 3 地 上 株高(cm)62.1 54.8 54.4 28.0 38.1 23.2 53,7 60.1 58.0 34.0 37.4 24.0 根 冠 長度(cm)21.2 17.9 18.2 10.4 13.8 9.9 16.4 20.0 16.7 11.3 11.4 8.6 地 上 ：根冠

地 上 質(zhì)量(cm)11.85 9.05 6.41 1.86 2,26 2.58 10.03 11.35 10.29 1.65 2,10 0.62 地 下 質(zhì)量(cm)2.89 3.31 0.91 0.66 0.74 1.20 2.44 2.91 2.78 0.57 0.67 0.29 葉 面 積(cm2)53.9 50.1 47.8 30.3 38.5 29.0

表 表 4 ：葉綠素 a、葉綠素 b 的含量測定：

649nmOD平均值 665nmOD平均值 Ca（mg/L）

Cb（mg/L）

C 總（mg/L）

完全培 1.014 2.12 22.60 9.79 32.29

養(yǎng) 缺鉀培養(yǎng) 0.76 1.72 18.77 6.38 25.15 注：計(jì)算公式如下：

Ca= 13.95*A 665 – 6.88*A 649 Cb= 24.96*A 649 – 7.32*A665 CT

= Ca+ Cb 表 5：

六、分析與討論 1、從表 1 的圖片和表 3 的葉面積比較中可看出，缺鉀培養(yǎng)液培養(yǎng)的的玉米苗的葉面積明顯比對照組的要小，而且可以看到老葉葉尖和葉緣有明顯變黃。根據(jù)觀察，玉米幼苗處理后第 6 天株高出現(xiàn)明顯差異，第 8 天老葉葉片出現(xiàn)塊狀失綠，葉脈顏色淺于完全培養(yǎng)組，隨后葉片出現(xiàn)黃斑，葉邊緣不平整，葉肉部分上凸，莖稈短細(xì)，葉尖干枯至枯萎，生長情況明顯比缺素組差。在第三周實(shí)驗(yàn)結(jié)束時(shí)，部分缺鉀培養(yǎng)植株的新葉的葉尖也開始有變黃，而部分老葉已經(jīng)枯萎或葉上有多條黃色條紋。在李富恒【 1 】

等對缺鉀玉米培養(yǎng)的研究中，證明了鉀元素影響植株生長，特別是葉面積的增大及酶的合成，這會使得植物的光合作用效率大大降低，使植株的粗細(xì)、高度等降低。

2、從表 2 可以看到，在未進(jìn)行缺素培養(yǎng)時(shí)，完全培養(yǎng)組和缺素培養(yǎng)組的玉米苗高度、生長狀況基本相同，但在培養(yǎng)過程中，完全培養(yǎng)的植株無論是粗細(xì)比缺素培養(yǎng)的植株要粗，高度比缺素培養(yǎng)都要高。

3、從表 3 可以看到，完全培養(yǎng)的植株除了地上株高等均比缺素培養(yǎng)的高，其根冠發(fā)達(dá)程度也比缺素培養(yǎng)的植株要大。根據(jù)觀察，完全培養(yǎng)植株的根部分支多，潔凈呈白色，根冠的長、寬都比缺素培養(yǎng)的大，且缺素植株的根部大部分發(fā)黃，有少許腐爛現(xiàn)象。根據(jù)李秧秧、范德純 [3]的實(shí)驗(yàn)，缺鉀嚴(yán)重影響地上部的生長，是因?yàn)殁涬x子是葉綠素合成途徑相關(guān)酶的激活劑，可以激活葉綠素合成的相關(guān)酶，促進(jìn)葉綠素的合成，以保證光合作用的進(jìn)行。在缺鉀營養(yǎng)液下，玉米葉片中葉綠素含量要低；在完全營養(yǎng)液中，提供充足的鉀離子，葉片葉綠素含量要高。缺素組的玉米苗葉綠素含量遠(yuǎn)遠(yuǎn)不及完全組的玉米苗，因此對地上的影響是最大的。

4、從表 4 可以看出，缺素組的分光光度計(jì)的 Ca 值、Cb 值及 C總比完全組的低，證明缺素組的葉綠素 a、b 均比完全組的要低，且葉綠素總量要比完全組的要低。在李富恒 [1] 等對缺鉀玉米培養(yǎng)的研究中，兩個(gè)品種的完全液培養(yǎng)的葉綠素含量均比缺鉀的高。鉀離子是葉綠素合成途徑相關(guān)酶的激活劑，可以激活葉綠素合成的相關(guān)酶，促進(jìn)葉綠素的合成，以保證光合作用的進(jìn)行。在缺鉀營養(yǎng)液下，玉米葉片中葉綠素含量要低；在完全營養(yǎng)液中，提供充足的鉀離子，葉片葉綠素含量要高。鉀不僅能促進(jìn)氮的吸收，而且能促進(jìn)含氮化合物向蛋白質(zhì)合成場所運(yùn)輸，促進(jìn)氨基酸合成蛋白質(zhì)和穩(wěn)定蛋白質(zhì)的結(jié)構(gòu)，因而可以促進(jìn)氮代謝，進(jìn)而加速光和色素的形成。缺鉀培養(yǎng)玉米葉片葉綠素的降低與缺鉀使氮循環(huán)受阻，導(dǎo)致光合能力弱，合成的光合產(chǎn)物少有關(guān)。

第四篇：《科學(xué)植物向光性的實(shí)驗(yàn)》實(shí)驗(yàn)報(bào)告

《科學(xué)植物向光性的實(shí)驗(yàn)》實(shí)驗(yàn)報(bào)告

（一）1、所需材料用具主要有：

豌豆種子、玉米種子、若干錫紙、不透光的紙盒二個(gè)，培養(yǎng)皿、剪刀、膠帶等。

2、實(shí)驗(yàn)原理簡述 ：在單側(cè)光刺激下，植物表現(xiàn)出向光性

3、實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)及觀察

（二）植物的向光性實(shí)驗(yàn)：準(zhǔn)備好八個(gè)裝滿泥土的花盆，把預(yù)先泡好的豌豆和玉米種子均勻地播種在土壤中，澆水。放在溫暖、光線充足之處，等待發(fā)芽。五天后，小苗從土壤中鉆出來。再三天后長到近5厘米時(shí)分別裝入兩個(gè)紙盒中，用錫紙封存好，在向光處挖一個(gè)直徑3厘米的小洞。再后三天每天打開兩盒子觀察，玉米和豌豆都向小洞方向彎曲生長，現(xiàn)象顯著地表現(xiàn)出來，而玉米更加明顯，如圖（一.二.三）。

上述現(xiàn)象是單側(cè)光能引起生長素分布不均造成的，向光一側(cè)生長素分布得少，背光一側(cè)生長素分布得多，生長得快，所以彎向光源生長。

本實(shí)驗(yàn)應(yīng)注意及存在的問題。選擇透水好的花盆，便于排水透氣，有利于植物萌發(fā)、生長。豌豆入土深度為豌豆本身和兩倍，太淺小苗不穩(wěn)，太深萌發(fā)過晚。紙盒不能太大，否則離小洞遠(yuǎn)的那兩盒向光性就不明顯。低溫植物生長較緩慢，高度不夠也影響向光性現(xiàn)象。

（三）結(jié)論：植物在光線影響下，會保持向一定方向生長的特性。

初二（11）班

熊天46號

第五篇：觀察植物細(xì)胞有絲分裂實(shí)驗(yàn)報(bào)告

觀察植物細(xì)胞有絲分裂實(shí)驗(yàn)報(bào)告

一、實(shí)驗(yàn)原理

1.觀察部位：植物體的根尖、莖尖等分生區(qū)的細(xì)胞。

2.分裂過程：高等植物細(xì)胞有絲分裂分為間期和分裂期的前期、中期、后期和末期，不同時(shí)期細(xì)胞染色體的行為變化有各自的特點(diǎn).。

3.觀察過程：先用低倍鏡找到根尖生長點(diǎn)的細(xì)胞（正方形、排列緊密、有的正在分裂），再用高倍鏡辨別各時(shí)期的染色體(染色質(zhì))變化，并判斷該細(xì)胞處于有絲分裂的哪個(gè)時(shí)期。

4.染色過程：細(xì)胞核內(nèi)的染色體容易被堿性染料（龍膽紫或醋酸洋紅等）著色。

二、實(shí)驗(yàn)器材

大蒜、顯微鏡、載玻片、蓋玻片、培養(yǎng)皿、刀片、鑷子、燒杯等 15%的鹽酸、95%的酒精、龍膽紫溶液等

三、實(shí)驗(yàn)步驟

1.前期培養(yǎng)：取大蒜若干放在裝滿清水的 100ML 燒杯上，讓它的底部接觸瓶內(nèi)水面，把燒杯放在溫 暖地方培養(yǎng)。

2．解離：實(shí)驗(yàn)前一天，取大蒜根尖，使用卡諾氏固定液（乙醇：冰醋酸=3:1）進(jìn)行 24H 固定，之后用蒸餾水沖洗，放入 70%酒精中，在 4℃冰箱中保存。待到實(shí)驗(yàn)時(shí)即可進(jìn)行解離處理。取經(jīng)過和未經(jīng)過固定液處理的根尖各 1-3 個(gè)，剪根尖 2CM，放入盛有 15%鹽酸和95%酒精 1:1 混合液的培養(yǎng)皿中并蓋好（以防鹽酸揮發(fā)），解離3~5min,此時(shí)根尖變得酥軟透明。

3.漂洗：用鑷子夾住伸長區(qū)一端，從培養(yǎng)皿中取出根尖，放到盛有清水的培養(yǎng)皿中漂洗 2~3min，可用鑷子或玻棒輕輕攪動。

4．染色：用鑷子夾住伸長區(qū)一端，從培養(yǎng)皿中取出根尖，放到干凈的載玻片中央，用刀片切去根尖大概 0.5mm，緊貼剛剛切的位置切下針尖大小的根尖，此處即為根尖分生區(qū)。利用準(zhǔn)備好的染液進(jìn)行染色，時(shí)間為 3~5min。

5.壓片：將被染上色的根尖蓋上蓋玻片（防止氣泡產(chǎn)生），然后在蓋玻片上放一層吸水紙，水平放在實(shí)驗(yàn)臺上，用拇指稍用力對其按壓，使根尖細(xì)胞呈云霧狀散開，此時(shí)再把蓋玻片周圍染液吸拭干凈即可。

6.觀察：先用低倍鏡觀察，找到分生區(qū)細(xì)胞（體積小、排列緊密、整齊、近似正方形，有的細(xì)胞正在分裂）。找到視野后用高倍鏡觀察。

四、實(shí)驗(yàn)結(jié)果 及討論

從所做實(shí)驗(yàn)觀察結(jié)果看來，處于間期的細(xì)胞最多，處于分裂時(shí)期的細(xì)胞較少。原因是細(xì)胞間期在細(xì)胞有絲分裂周期中占的比重大。此次實(shí)驗(yàn)觀察到了有絲分裂各時(shí)期形態(tài)。比較成功